Presentazione standard di PowerPoint

GENOMICA E FAUNA ALPINA:
UN NUOVO APPROCCIO DI INDAGINE E
MONITORAGGIO DELLA
BIODIVERSITÀ VALDOSTANA
RICERCATORE TEAM LEADER:
DOTT.SSA VELCA BOTTI
WORKSHOP - MERCOLEDÌ 17 SETTEMBRE 2014, LA SALLE, CENTRO DI RICERCA SCIENTIFICO-NATURALISTICO DEL MARAIS
IL
PROGETTO
Intende fornire nuovi strumenti di biologia molecolare
per studiare, monitorare, tutelare e valorizzare
la BIODIVERSITA’ ANIMALE che caratterizza i territori valdostani
Ricchezza
Benessere degli ecosistemi
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BIODIVERSITÀ E PANORAMA
LEGISLATIVO
*
Convenzione sulla Diversità Biologica (CBD)
*
Convenzione sulle Specie Migratrici appartenenti alla fauna selvatica (CMS - Convenzione di
Bonn)
*
Convenzione sul commercio internazionale delle specie di fauna e flora selvatiche minacciate
di estinzione (CITES - Convenzione di Washington)
*
Convenzione per la Conservazione della vita selvatica e dell’ambiente naturale in Europa
(Convenzione di Berna)
*
Convenzione sulle zone umide di importanza internazionale (Convenzione di Ramsar)
*
Protocollo relativo alle Aree Specialmente Protette e la Biodiversità in Mediterraneo
(Protocollo ASP)
*
Convenzione per la protezione del mar Mediterraneo (Convenzione di Barcellona)
*
Accordo internazionale Santuario Pelagos
*
Trattato Internazionale sulle Risorse fitogenetiche per l'Alimentazione e l'Agricoltura
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OBIETTIVI
DEL PROGETTO
 Studio della biodiversità della classe Insecta e attraverso l’utilizzo
della tecnica del DNA BARCODING (Odonata, Orthoptera,
Lepidoptera)
 Messa a punto di tecniche di DNA FINGERPRINTING per lo studio
dell’ecologia di Circaetus gallicus (biancone)
 Sviluppo di protocolli per l’identificazione specifica di vertebrati
(per la LOTTA AL BRACCONAGGIO a partire da porzione carnee e
per il MONITORAGGIO della fauna selvatica locale a partire da tracce
biologiche)  DNA BARCODING
Allestimento una banca del DNA della fauna valdostana che possa
essere sfruttata per progetti di ricerca futuri
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IL DNA BARCODING PER INSECTA E
VERTEBRATI
 DNA a supporto dell’identificazione delle specie
 analisi gene mitocondriale CITOCROMO C OSSIDASI I (COI o cox1)
BARCODE FAUNA
650 pb circa del COI
 vantaggi: buona variabilità interspecifica, bassa variabilità intraspecifica,
assenza di introni, limitata esposizione ad eventi di ricombinazione,
disponibilità di siti di annealing per primer robusti e universali (Folmer
et al. 1994)
elaborazione e
correzione dei dati
grezzi di sequenza
sequenziamento
estrazione
DNA
(cycle sequencing)
amplificazione DNA
(PCR)
elettroforesi
capillare
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IL
DNA FINGERPRINTING PER IL BIANCONE
 per valutare la fedeltà dei SINGOLI INDIVIDUI
ai siti riproduttivi valdostani
Adulto e piccolo al nido
 primo utilizzo negli anni ‘80, diffusasi
rapidamente per l’identificazione di soggetti
sospettati di gravi reati tra cui l’omicidio
 per l’identificazione individuale basata
sequenze ripetute di basi che variano da
individuo a individuo
© Archivio fotografico PNMA
su
A. RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism)
 più comune
A.
B. ANALISI MICROSATELLITI o STR (Short Tandem Repeat)
 più recente
 ricerca di circa 13 loci microsatelliti
B.
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LO
STATO ATTUALE DEL PROGETTO
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LABORATORIO
OPERATIVO
Un laboratorio operativo costa tempo, denaro e fatica
Sistema di
qualità OK
Reagenti e
consumabili
OK
Strumentazione OK
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CAMPIONAMENTI
E I CAMPIONATORI
SELEZIONE
• LUOGHI DI CAMPIONAMENTO
• SPECIE DA INDAGARE
• MODALITÀ DI CAMPIONAMENTO (a secco, buste e contenitori monouso,
lontano da fonti di calore)
• MODALITÀ DI REGISTRAZIONE DEL CAMPIONE SUL CAMPO E IN
LABORATORIO
• MODALITÀ DI CONSERVAZIONE DEL CAMPIONE (-20°C)
CAMPIONATORI
•
•
•
•
•
•
Dott. Baroni Daniele
Dott. Bocca Massimo
Dott.ssa Bosio Gianna
Dott.ssa Christille Claretta
Dott. Marguerettaz Fabio
Dott. Salomon – CRAS Oasi di Sant’Alessio (PV)
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ANALISI
MOLECOLARI: ESTRAZIONE DEL DNA
CAMPIONE DI PARTENZA
PROCEDURA OPERATIVA STANDARD
N °POS
Insetti
ESTRAZIONE DEL DNA DA INSETTI,
ARTROPODI, ASCARIDI E VERMI PIATTI
POS FA 06
Tessuti
(pelo, porzioni carnee)
ESTRAZIONE DEL DNA DA TESSUTI
ANIMALI
POS FA 05
Sangue e fluidi corporei
ESTRAZIONE DEL DNA SANGUE E FLUIDI
CORPOREI
POS FA 09
Depositi fecali
ESTRAZIONE DEL DNA DA DEPOSITI FECALI
POS FA 07
Penne, piume e gusci d’uovo
ESTRAZIONE DEL DNA DA PENNE, PIUME E
GUSCI D’UOVO
POS FA 08
Matrici animali
ESTRAZIONE VELOCE DEL DNA DA
CAMPIONI DI ORIGINE ANIMALE
POS FA 02
step critico nel workflow sperimentale del sequenziamento del DNA!
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ANALISI MOLECOLARI: ITER
ANALISI MOLECOLARI: ITER
GLI ODONATI
 BIOINDICATORI gestione ambientale e valutazione dei cambiamenti a breve
e lungo termine
129 CAMPIONI
32
SPECIE
ADULTI
ESUVIE
LARVE
(43
segnalate)
74%
BIODIVERSITA’
VALDOSTANA
 per ogni specie: 3 esemplari, luoghi diversi
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GLI ODONATI
ANISOTTERO
ZIGOTTERI
ESUVIA
© Archivio fotografico MRSN- Foto Botti Velca
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GLI ODONATI
Luoghi del campionamento
AREE TUTELATE E AREE UMIDE DELLA VALLE D’AOSTA
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GLI ODONATI
© Archivio fotografico MRSN- Foto Marguerettaz Fabio
Orthetrum coerulescens
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GLI ODONATI
92
88
88
164
200
• ESTRAZIONI DEL DNA
• REAZIONI DI AMPLIFICAZIONI DEL TARGET COI CON SUCCESSO
• (+ quantificazione dopo gel di agarosio con GelAnalyzer software)
• REAZIONI DI PURIFICAZIONE DELL’AMPLICONE
• REAZIONI DI CYCLE SEQUENCING E PURIFICAZIONE DEL
PRODOTTO DI CYCLE SEQUENCING
• SEQUENZE OTTENUTE (FORWARD E REVERSE)
!!! ELABORAZIONE E ANALISI DELLE SEQUENZE
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GLI
ODONATI
!!! ELABORAZIONE E ANALISI DELLE SEQUENZE
.ab1
Sequencing
analysis
software 6
.SEQ
BioEdit
software
FASTA
BLASTn
BOLD Systems
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GLI ODONATI
SPECIE di ODONATA
FAMIGLIA
LUOGO DEL CAMPIONAMENTO
Aeshna cyanea
Aeshnidae
Pollein, La Thuile (Colle S. Carlo), Lago di Villa
Aeshna grandis
Aeshnidae
Lago di Loz
Aeshna mixta
Aeshnidae
Les Iles, Quart (stagno vicino a casello autostradale)
Aeshna juncea
Aeshnidae
Riserva Naturale del Marais, Meyes, Parco Mont Avic
Anax imperator
Aeshnidae
Lago di Villa, Aosta (giardinetti Champ- Bartelet)
Chalcolestes viridis
Lestidae
Les Iles
Coenagrion hastulatum
Coenagrionidae
Petosan (La Thuile)
Coenagrion puella
Coenagrionidae
Lago di Villa, Lolair, Bionaz
Coenagrion pulchellum
Coenagrionidae
Lago di Lot, Lolair
Cordulegaster bidentata
Cordulegastridae
Pont Saint Martin, Hône
Cordulia aenea
Corduliidae
Lago di Villa
Crocothemis erythraea
Libellulidae
Lago di Villa, Les Iles
Enallagma cyathigerum
Coenagrionidae
Les Iles, Lago di Lolair
Erythromma viridulum
Libellulidae
Les Iles
Ischnura elegans
Coenagrionidae
Lago di Lot, Lago di Villa e Les Iles
Ischnura pumilio
Coenagrionidae
Les Iles, Lago di Lot, Aosta (giardinetti ChampBartelet), Quart (stagno vicino a casello autostradale)
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GLI ODONATI
SPECIE di ODONATA
FAMIGLIA
LUOGO DEL CAMPIONAMENTO
Lestes sponsa
Lestidae
Lago di Loz, Champlong (Verrayes)
Lestes virens
Lestidae
Riserva naturale del Marais
Leucorrhinia dubia
Libellulidae
Riserva Mont Mars (Lac le long), Parco Mont Avic
Libellula depressa
Libellulidae
Lago di Villa
Libellula quadrimaculata
Libellulidae
Lago di Villa, Stagno di Holay
Orthetrum albistylum
Libellulidae
Les Iles
Orthetrum cancellatum
Libellulidae
Les Iles
Orthetrum coerulescens
Libellulidae
Lago di Villa
Platycnemis pennipes
Platycnemididae
Lago di Villa, Les Iles
Somatochlora alpestris
Cordulidae
Riserva Mont Mars (Lac le long), Comba Thuilette
Somatochlora arctica
Cordulidae
Talweg Val Ferret
Sympetrum danae
Libellulidae
Sympetrum depressiusculum
Libellulidae
Les Iles, Quart (stagno vicino a casello autostradale)
Sympetrum flaveolum
Libellulidae
Lago di Loz, Champlong (Verrayes)
Sympetrum sanguineum
Libellulidae
Lago di Loz, Riserva naturale del Marais, Teppe
Sympetrum striolatum
Libellulidae
Lago di Villa
Meyes, Talweg Val Ferret, Riserva naturale del Marais,
Champlong (Verrayes)
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GLI
ODONATI
 IL DNA BARCODING riconosce direttamente su BOLD Systems 21/26 specie,
4 su 26 sono in corso di valutazione
 ESUVIE NEGATIVE AL SEQUENZIAMENTO: DNA rilasciato dalla libellula
durante lo sfarfallamento è insufficiente per essere rilevato al
sequenziamento
 Platycnemis pennipes dà aspecifici all’amplificazione del BARCODE:
mutazioni nel sito di appaiamento dei primer
BARCODE COI
(Folmer et al. 1994)
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IL BIANCONE
(CIRCAETUS
GALLICUS)
 VULNERABILE (VU) – Lista Rossa IUCN
 N° individui maturi < a 1000 (Brichetti & Fracasso 2003, Petretti 2008)
 minacciato da uccisioni illegali, declino delle popolazioni di rettili
di cui si ciba e dalla sottrazione degli ambienti utili alla caccia
3 sangue
intero
1 resti di
borra
119 penne
130
campioni
6
Sterco
1
frammento
d’uovo
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IL BIANCONE
ANNO
(CIRCAETUS
GALLICUS)
N° e TIPOLOGIA CAMPIONE
SITI DI PROVENIENZA
Issogne Nord, Jovencan, Morgex,
2014
49 penne, 1 frammento d’uovo, 4 sterco, 1 resti di borra
Fénis, Pontey, Chambave, Saint
Vincent
Issogne, Jovencan, Arvier, Pollein,
2013
54 penne + 2 sterco
Saint-Vincent, Donnas
2012
1 penna
Issogne
2007
1 penna
Issogne
2006
8 penne
Issogne
2005
6 penne
Issogne
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IL BIANCONE
PRELIEVO SANGUE INTERO
(CIRCAETUS
GALLICUS)
SANGUE INTERO
DNA BIANCONE
© Archivio fotografico MRSN- Foto Botti Velca
Analisi Next Generation
Sequencing
- individuazione nel
biancone di loci
microsatelliti
- sviluppo di un protocollo
per l’identificazione
individuale
CRAS Oasi Sant’Alessio (PV)
Gel di agarosio 1%, marker GeneRuler 1Kb, corsa 1 h, 120V)
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GLI ORTOTTERI
 poco studiati dal punto di vista genetico e poco «barcodati»
 problemi di classificazione: molteplici caratteristiche
numerose sottodistinzioni
morfologiche
es. genere Glyptobothrus ha come unici caratteri diagnostici il lobo e le carene del pronoto
(angolose) pertanto una determinazione genetica può risultare fondamentale.
113
CAMPIONI
38
SPECIE
ADULTI
(73
segnalate)
© Archivio fotografico MRSN- Foto Baroni Daniele
52%
BIODIVERSITA’
VALDOSTANA
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GLI ORTOTTERI
© Archivio fotografico MRSN- Foto Baroni Daniele
© Archivio fotografico MRSN- Foto Baroni Daniele
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I LEPIDOTTERI
 Collezione museale con specie non diagnosticate o dubbie
52
CAMPIONI
© Archivio fotografico MRSN
2
ADULTI
ZAMPE
COLLEZIONE
MUSEO
2013
© Archivio fotografico MRSN
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I LEPIDOTTERI
 Esemplari dalla difficoltosa diagnosi morfologica
FAMIGLIA
Hesperiidae
Hesperiidae
Hesperiidae
Lycaenidae
Nymphalidae
Nymphalidae
Pieridae
Pieridae
Pieridae
GENERE
INDICAZIONI PER IL DNA BARCODING
da confermare esemplari diagnosticati come Carcharodus
Carcharodus
alceaee e altri a cui non è stata attribuita la specie
Pyrgus
da confermare esemplari a cui non è stata attribuita la specie
Thymelicus
da confermare esemplari a cui non è stata attribuita la specie
da confermare esemplari diagnosticati come Polyommatus
Polyommatus bellargus, come Polyommatus daphnis, Polyommatus icarus e
altri a cui non è stata attribuita la specie
da confermare esemplari diagnosticati come Coenonympha
Coenonympha
arcania
Hipparchia
da confermare Hipparchia fagi
da confermare esemplari diagnosticati come Colias alfacariensis
Colias
e come Colias hyales
Leptidea
da confermare Leptidea sinapsis o reali
da confermare esemplari diagnosticati come Pieris (Pontia)
Pieris
edusa, Pieris manni, Pieris rapae, Pyeris alphacariensis, Pyeris
bryoniae, Pyeris napi
WORKSHOP - MERCOLEDÌ 17 SETTEMBRE 2014, LA SALLE, CENTRO DI RICERCA SCIENTIFICO-NATURALISTICO DEL MARAIS
VERTEBRATI
DI INTERESSE REGIONALE
Durante l’autunno 2014 la struttura FLORA, FAUNA, CACCIA E PESCA del
DIPARTIMENTO RISORSE NATURALI E CORPO FORESTALE (Assessorato
Agricoltura e Risorse Naturali) fornirà porzioni carnee per la validazione
del DNA barcoding sulle seguenti specie:
Capra ibex
Cervus elaphus
Rupicapra rupicapra
Lepus timidus
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GRAZIE
PER L’ATTENZIONE!
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