Contemporary Reviews in Cardiovascular Medicine Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging Part 1 of a 2-Part Review Jason C. Kovacic, MD, PhD; Pedro Moreno, MD; Vladimir Hachinski, MD, DSc; Elizabeth G. Nabel, MD; Valentin Fuster, MD, PhD Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Longevity is a vascular question, which has been well expressed in the axiom that man is only as old as his arteries. To a majority of men death comes primarily or secondarily through this portal. The onset of what may be called physiological arterio-sclerosis depends, in the first place, on the quality of arterial tissue which the individual has inherited, and secondarily on the amount of wear and tear to which he has subjected it. —Sir William Osler, 18911 greater in elderly patients.8 This serves as a sobering reminder that even though many exciting advances that might help fight the ravages of old age appear to be at the point of clinical translation, at the present time, clinicians must remain vigilant to ensure the delivery of best medical care to all elderly patients. In this 2-part review, we discuss important pathobiological changes that occur with aging in the cardiovascular system and how they relate to clinical outcomes. Furthermore, we explore areas of scientific progress that may, optimistically, be translatable into targeted clinical strategies to help offset the looming impact of the aging epidemic on morbidity, mortality, and healthcare resource use. Readers should be aware that we do not propose to exhaustively discuss all potential biological players in this complex arena. Rather, we will attempt to selectively highlight novel and important broad aspects of basic and cellular biology and clinical medicine that are of significant relevance to this field. In this first installment, we focus at the basic-science level on key advances in our understanding of the cellular aging process and look to extend these observations to the aging adult vasculature. I n 2030, when all of the baby boomer generation will be ⱖ65 years of age, nearly 1 in 5 US residents is expected to be ⬎65 years of age. By 2050, this age group is projected to more than double in number, from 38.7 million in 2008 to an estimated 88.5 million (Figure 1).2 Similarly, the population ⱖ85 years of age is expected to more than triple, from 5.4 million in 2008 to 19 million by 2050.2 With this aging of the population, the number of people at risk for adverse cardiovascular events, in particular atherothrombosis, stroke, myocardial infarction, and heart failure, will increase dramatically. The importance of these projections is underscored by the fact that currently, although octogenarians represent only 5% of the US population, they account for 20% of all hospitalizations for myocardial infarction and 30% of all myocardial infarction–related deaths.3 Telomere Shortening and Cellular Senescence Mechanisms of Telomere-Telomerase Function In 2009, the Nobel Prize for Physiology or Medicine was awarded to Drs Blackburn, Greider, and Szostak for their discovery of how chromosomes are protected by telomeres and the enzyme telomerase during DNA replication. In brief, because the DNA replication machinery requires an initial point of attachment on the DNA strand, small end-terminal components of replicating DNA segments fail to undergo synthesis during cellular division. As a result of this end replication problem, newly synthesized DNA strands are shorter than the original template. Unchecked, genetic material would be lost each time a cell divides. Telomeres and telomerase address this problem by providing a repetitive template for the enzymatic repair of the ends of chromo- A Looming Aging Epidemic Despite their increased risk of adverse cardiac events, elderly patients are less likely to receive appropriate therapy. This paradox is perhaps related to the fact that elderly patients with cardiovascular disease are more likely to be frail.4 Heightened concerns that frail older patients may be more susceptible to adverse side effects, particularly in the setting of complex pharmacotherapy, can lead to efficacious therapies being withheld.5–7 As an example, although the relative risk reduction of cholesterol-lowering therapy may be equivalent in the young and elderly, the absolute risk reduction, or number of adverse cardiovascular events prevented, may be significantly From The Zena and Michael A. Wiener Cardiovascular Institute (J.C.K., P.M., V.F.) and Marie-Josée and Henry R. Kravis Cardiovascular Health Center (V.F.), Mount Sinai School of Medicine, New York, NY; Department of Clinical Neurological Sciences, University of Western Ontario, London, Ontario, Canada (V.H.); Brigham and Women’s Hospital, Boston, MA (E.G.N.); and Centro Nacional de Investigaciones Cardiovasculares (CNIC), Madrid, Spain (V.F.). This is part 1 of a 2-part review. Part 2 will appear in the May 3rd issue of the journal. Correspondence to Valentin Fuster, MD, PhD, Mount Sinai School of Medicine, One Gustave L. Levy Place, Box 1030, New York, NY 10029. E-mail [email protected] (Circulation. 2011;123:1650-1660.) © 2011 American Heart Association, Inc. Circulation is available at http://circ.ahajournals.org DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.110.007021 1650 Kovacic et al Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging 1651 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Figure 1. Projected US population demographics by age and sex in 2010 (top), 2030 (middle), and 2050 (bottom). The baby boomer cohort (Baby Boom) is also highlighted. Source: Population Division, US Census Bureau.2 somes. Telomeres can be conceptually thought of as a protective section of genetic overhang at the ends of linear chromosomes (Figure 2).9 To a point, cells are unaffected by a degree of telomere loss and continue to function normally. However, when they become too short, telomeres signal the arrest of cellular proliferation. Cellular senescence (from the Latin word senex, meaning old age or old man) then ensues, and can be considered the cellular inability to undergo further division. To avoid senescence, germline and some somatic cells produce telomerase, an enzyme that catalyzes DNA synthesis to maintain telomere length. At the cellular level, senescence is potentially an important protective mechanism 1652 Circulation April 19, 2011 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Figure 2. Telomere structure and microscopic appearance. A, Simplified schematic diagram of telomere structure and subcellular location. Telomeres are located at the ends of linear chromosomes; in humans, they are composed of hundreds to thousands of tandem DNA repeat sequences: hexameric TTAGGG in the leading strand and CCCTAA in the lagging strand. Additional protective proteins are also associated with telomeric DNA and are collectively called shelterin (TRF1, TRF2, TIN2, POT1, TPP1). The 3⬘ end of the telomeric leading strand terminates as a single-stranded overhang, which folds back and invades the double-stranded telomeric helix. B, Telomeres can be directly visualized under the microscope at the ends of metaphase chromosomes (4 telomere signals per chromosome) by fluorescence in situ hybridization. Reproduced from Calado and Young9 with permission of the publisher. Copyright © 2009, Massachusetts Medical Society. against tumorigenesis that is characterized by growth arrest, resistance to apoptosis, and altered gene expression typified by transcription of the cyclin-dependent kinase inhibitors p21Cip1 and/or p16 (Figure 3).10,11 However, the role of senescence in tumorigenesis is somewhat controversial because, at the level of the individual, reduced leukocyte telomere length is associated with an increased risk for cancer of any type.12 Telomerase knockout mouse models have shed further light on the critical functioning of this system. With progressive generations, telomerase-deficient mice lose all detectable telomeres,13 become infertile, exhibit hematopoietic dysfunction and cardiac failure,14 and suffer from a range of age-related diseases affecting highly proliferative tissues, including the immune system.15 Telomere-Telomerase Function and Atherothrombotic Disease Several clinical syndromes have now been directly linked to primary telomere diseases, including certain forms of bone marrow failure, aplastic anemia, dyskeratosis congenita, and pulmonary fibrosis.15 But what is the evidence that telomere shortening is implicated in cardiovascular disease and vascular aging? A number of clinical cross-sectional case-control16 –18 and longitudinal cohort studies19 –21 have related an increased incidence of coronary artery or atherosclerotic disease to shortened telomere length in peripheral blood leukocytes. Mean leukocyte telomere length was found to decrease by ⬇6% to 9% per decade,19 and several of these studies noted the robust predictive value of shortened telomere length for future cardiovascular events, including the observation that the predictive power of this index appears to persist even after controlling for standard clinical, inflammatory, and echocardiographic markers of risk.20 Furthermore, it was found that treatment with pravastatin can attenuate the increased cardiovascular risk associated with telomere attrition, that intensive lipid-lowering therapy with atorvastatin can arrest telomere shortening in endothelial progenitor cells,18 and that among stable coronary artery disease patients, an inverse relationship exists between baseline levels of omega-3 fatty acids and the rate of telomere shortening.22 Limited data have also confirmed telomere shortening in cells from the diseased aortic wall compared with the wall of healthy aortas.23 Of great interest, maintenance of telomere length may play a role in one of the key vascular questions that has intrigued clinicians for several decades: Why is the internal mammary artery relatively protected from atherosclerotic disease? In an ex vivo human study, Chang and Harley24 first noted that telomere loss in the intima of the iliac artery was greater than in the internal mammary artery, and that the difference in telomere length between these locations increased with patient age. It has since been shown that, compared with internal mammary arteries, human coronary arteries exhibit a far greater degree of vascular endothelial cell senescence and that this senescent phenotype is reversible by augmenting telomerase activity.25 In addition to age, statins, and anatomic vessel location, several factors influence telomere length, telomerase activity, and cellular senescence in the vasculature. They include the endothelial isoform of nitric oxide synthase, estrogen Kovacic et al Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging 1653 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Figure 3. Cellular senescence. A, Senescence can be triggered by extreme cellular stress, and is thought to be an important protective mechanism against malignant cellular transformation. Because it involves the conversion of a replicating cell to a nonreplicating state, by definition, senescence affects only mitotically active cells. As shown, stressors associated with progression to senescence include shortened or dysfunctional telomeres, nontelomeric DNA damage, strong mitogenic signals (eg, those produced by oncogenes), and other adverse stimuli. Often, but not universally, these stressors result in a triggering of either the p53-p21Cip1 or p16 tumor suppressor pathways. Features typifying senescent cells vary, depending on cell type and triggering event(s).10 B, Genetic deletion of senescence-associated p21Cip1 in vascular smooth muscle cells (VSMCs) results in the opposite effects of senescence: enhanced cellular proliferation and increased apoptosis. Shown here are in vitro growth rates of p21Cip1 competent (p21⫹/⫹) vs p21Cip1 genetic knockout (p21⫺/⫺) VSMCs (left) and percentage of apoptotic cells (cells staining positive for annexin V) after application of an apoptotic stimulus (H2O2) for 1 hour (right) (*P⬍0.05, ***P⬍0.001 for p21⫺/⫺ vs p21⫹/⫹). Reproduced from Olive et al11 with permission of the publisher. Copyright © 2008, American Society for Clinical Investigation. receptor-␣,26 and oxidative stress.27 In particular, ex vivo human data have indicated that oxidative stress leads to accelerated telomere attrition, vascular smooth muscle cell senescence, and, ultimately, the progression of atherosclerotic disease.27 Endothelial cell expression of intercellular adhesion molecule-1 increases with senescence25,28 leading to enhanced endothelial binding of monocytes, a key event in atherosclerotic progression.29 By enhancing the generation of reactive oxygen species, the binding of monocytes may establish a positive-feedback loop, resulting in telomere shortening and a further increase in endothelial cell senescence.30 It is also suggested that key mediators of the senescent vascular cell phenotype are the cyclin-dependent kinase inhibitors p21Cip1 and p53, both known to be important mediators of vascular inflammation.11,31,32 Exercise upregulates telomerase activity in the thoracic aorta and circulating mononuclear cells in rodents while concurrently reducing the expression of p53 and other vascular regulators of senescence and apoptosis.33 Extending these animal findings to humans, it has been shown that exercise correlates with the maintenance of telomerase activity and telomere length.33 Finally, somewhat paradoxically but potentially a result of altered cytokine expression, it has been shown that vascular smooth muscle cell senescence is associated with a 2-fold increase in neointimal formation after vascular injury.34 Taken as a whole, our nascent knowledge of cellular senescence and telomere functionality already attests to the importance of this system in the evolution of the aging vascular phenotype, and we anticipate that the ability to therapeutically manipulate this system would represent a critical advancement in the treatment of atherothrombotic disease in the aging population. Vascular Stem Cells and Progerin Age-Related Decline in Stem Cell Number and Function We have previously reviewed the major contributions that bone marrow and vascular stem cells likely make to new vessel formation (capillogenesis) and the maintenance of vascular homeostasis.35–38 Although the precise definition, characteristics, and origin of endothelial and vascular progenitor cells remain controversial, their overall importance appears clear.36 An emerging theme of this work is the mounting evidence that with age, stem cell numbers and various aspects of stem cell function are reduced, or become exhausted. This is thought to lead to an impaired vascular homeostatic and reparative capacity, ultimately culminating in age-related atherosclerotic and vascular disease progression. Although telomere attrition and the ensuing cellular senescence are involved in age-related stem cell impairment (see above), various other processes are also implicated. For example, the production of angiogenic cytokines declines with age, and the trafficking of stem cells to sites of ischemia may become impaired in the elderly owing to a failure of the 1654 Circulation April 19, 2011 normal activation and stabilization of hypoxia-inducible factor-1␣.39,40 Exercise may mitigate some of these agedependent perturbations in stem and progenitor cell number and function. In patients with coronary artery disease or cardiovascular risk factors, several studies have shown that exercise training for 1 to 3 months leads to a significant increase in circulating endothelial progenitor cell number and function.41,42 Similarly, in patients with peripheral vascular disease, exercise training to the point of leg pain (claudication) for 28 days produced comparable results.43 Potentially, these benefits may extend to the healthy but sedentary elderly, with exercise training for 3 months increasing both the colony-forming capacity and migratory activity of endothelial progenitor cells from previously inactive middle-aged and older men.44 Insights on Normal Aging From Werner and Hutchinson-Gilford Progeria Syndromes Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Significant progress in our understanding of the mechanisms of impaired stem cell function and vascular aging has recently come from studies of premature aging diseases, such as the Werner syndrome and Hutchinson-Gilford progeria syndrome (HGPS). Persons with HGPS suffer a premature and inexorable aging process, with mortality most commonly caused by myocardial infarction or cerebrovascular events at an average age of 13 years.45 Histologically, HGPS is characterized by variable medial vascular smooth muscle cell dropout (loss) and atherosclerosis with a prominent fibrotic response.46,47 Hutchinson-Gilford progeria syndrome most commonly arises from a single C3 T nucleotide substitution in exon 11 of the lamin A gene, resulting in the activation of a cryptic splice site and production of a prelamin A protein with an internal deletion of 50 amino acids from near the carboxy terminus.48 Mutant prelamin A is permanently farnesylated, and does not undergo a final and requisite enzymatic cleavage to form the fully active lamin A protein. Instead, the mutant protein, known as progerin, accumulates and remains anchored to the nuclear envelope, acting in a dominant negative gain-of-function manner, ultimately compromising the structural and transcriptional integrity of the nucleus (Figure 4).49 Cells obtained from Zmpste24⫺/⫺ mice, a model of HGPS, undergo premature senescence as a result of an impaired ability to respond to DNA damage.50 However, Zmpste24⫺/⫺ mice deficient in the cell cycle regulator p53, previously mentioned as a factor mediating cellular senescence, display partial reversal of the HGPS-like phenotype and have an extended lifespan.51 Suggesting a dose-response effect, heterozygous knockout mice (Zmpste24⫹/⫺) exhibit a milder phenotype than homozygous knockout animals (Zmpste24⫺/⫺).52 The enhanced cellular senescence of HGPS and HGPS-like models has been coupled with the observation that HGPS is characterized by diseases of organs with high cell turnover (skin, hair, skeleton, subcutaneous, and adipose tissue). This led to the hypothesis that the regeneration of tissues with high cell turnover, including the vasculature, may be reduced, owing to stem and progenitor cell exhaustion.53 The plausibility of this hypothesis is increased by the additional observation that HGPS is not associated with malignancy, with the high rate of cellular senescence and apoptosis speculated to deplete stem cell pools and to circumvent the malignant process.53 Because malignancy is thought to often involve stem cell transformation, the arguments for stem cell depletion or exhaustion in the elderly, in turn, are supported by the fact that in normal individuals, the rates of malignancy peak between 40 to 80 years of age but decline thereafter.54 The work of Scaffidi and Misteli55 has greatly reinforced these paradigms. These investigators found that progerin expression leads to activation of the Notch signaling pathway, with subsequent loss of physiological mesenchymal stem cell regulation, aberrant stem cell differentiation, and progressive deterioration of tissue function. Furthermore, it was recently shown that cells from healthy but elderly individuals (81 to 96 years of age) express the mutant progerin protein, with aberrant lamin A localization and nuclear defects similar to those seen in HGPS.56 Importantly, prelamin A protein accumulation has also been described in aged but otherwise healthy human vessels and vascular smooth muscle cells, with prelamin A levels proposed as a novel marker of vascular smooth muscle cell aging.46,57 Taken as a whole, the lamin A gene mutation serves to illustrate the importance of various aspects of normal and pathological aging, in particular an increase in cellular senescence and impaired stem cell functionality, with the same molecular mechanisms responsible for the premature aging seen in HGPS acting at a low level in apparently healthy but elderly cells.56 Currently, the results of a phase II clinical trial of lonafarnib in patients with HGPS are eagerly awaited.58 Lonafarnib is a farnesyltransferase inhibitor that blocks the posttranslational farnesylation of prelamin A, and preclinical studies have demonstrated that inhibition of farnesylation will retard the aberrant functioning of the progerin protein.59 Indeed, the treatment of transgenic mice that overexpress the human progerin protein with a farnesyltransferase inhibitor leads to an inhibition of the development and further progression of vascular disease in this mouse model that recapitulates the human cardiovascular disease phenotype.60,61 If this clinical trial proves even partially successful, it will represent a major breakthrough for those afflicted with HGPS, and may pave the way for a more extensive exploration of these pathways in the normal aging process. Obesity, Caloric Restriction, and Sirtuins The maintenance of an appropriate body weight is paramount to avoiding cardiovascular morbidity and mortality with age. Readers of this review are well aware that obesity is associated with an elevated incidence of hypertension, diabetes mellitus, and dyslipidemia, all factors known to result in cardiovascular disease. Obesity also indirectly compounds several other harbingers of cardiovascular disease by leading to sleep apnea, hindering the capacity to undertake exercise, increasing immobility, and adversely affecting immune functioning. Caloric Restriction Extends Lifespan A fascinating extension of these abovementioned data is that caloric restriction is known to extend lifespan in organisms ranging from yeast to mammals.62 Although extremely diffi- Kovacic et al Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging 1655 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Figure 4. Genetic and nuclear defects in Hutchinson-Gilford progeria syndrome (HGPS). A, HGPS is caused by a single base change of C to T at position 1824 of the LMNA gene. This mutation does not change the encoded amino acid (glycine) but results in the activation of a cryptic splice site 150 nucleotides upstream of the usual exon 11-to-12 splice junction. The lamin A precursor, prelamin A, undergoes a series of posttranslational modifications, including farnesylation at its C-terminal CAAX motif (CSIM in this case) by the enzyme farnesyltransferase (FTase), cleavage of the terminal 3 amino acids (SIM) by Zmpste24, and carboxymethylation by the enzyme isoprenylcysteine carboxymethyltransferase (ICMT). A second and final cleavage by Zmpste24 removes the terminal 15 amino acids and the farnesyl group, allowing mature lamin A to be inserted into the lamina. In contrast, because of its 50 –amino acid internal deletion, progerin lacks the second cleavage site and thus remains permanently farnesylated. B, Potential mechanisms of disease: HGPS nucleus. It is believed that the permanently farnesylated state of progerin leads to its disruption of the nuclear lamina and multiple other nuclear defects, including blebbed nuclear morphology, altered interactions with other nuclear and cytosolic intermediate filaments, 1656 Circulation April 19, 2011 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 cult to prove in humans, this phenomenon has been observed across multiple different species, and anecdotal evidence derived from religious ascetics suggests that longevity should similarly be extended in humans practicing caloric restriction. Other benefits of caloric restriction potentially include enhanced alertness, improved immune function, and persistence of youthful characteristics.63 Multiple signaling systems are likely to be involved in the antiaging effects of caloric restriction, including the nutrient-responsive target of rapamycin (now known as sirolimus) pathway. Selman et al64 demonstrated that deletion of ribosomal S6 protein kinase 1, a downstream mediator of the target of rapamycin pathway and transducer of anabolic signals regulating cell growth and metabolism, induces gene expression patterns similar to caloric restriction, increasing lifespan and protecting against age-related diseases in mice. The fact that target of rapamycin pathway inhibition by rapamycin may increase longevity has major implications, because this drug is already licensed for use as an immunosuppressive agent. Importantly, as a cautionary note, it is unknown whether the immunosuppressive effect of rapamycin would ultimately prove detrimental if this drug were given long term to promote longevity in otherwise healthy humans. Recently, a very strong case was made that reduced insulin-like growth factor signaling is another likely mechanism mediating longevity resulting from caloric restriction.65 However, as a paradox yet to be resolved, although reduced insulin-like growth factor-1 may prolong life in multiple species, increased insulin-like growth factor-1 levels are known to be atheroprotective.66,67 Sirtuins are important players in the antiaging signaling network, and sirtuin 1 (SIRT1) is implicated in caloric restriction. Originally classified as histone deacetylases, sirtuins exert numerous effects that extend beyond histone modification. Current data indicate that the mammalian sirtuin family consists of 2 nuclear, 1 nucleolar, 1 cytoplasmic, and 3 mitochondrial proteins.68 Of these, several appear to be related to cellular stress, cell survival/aging, telomere maintenance,69 and cellular metabolism.68 Sirtuin 1 and Cardiovascular Disease Although certain other sirtuins may be biologically harmful,68 a large body of evidence implicates SIRT1 in a protective role against cardiovascular and neurodegenerative disease. Sirtuin 1, the human ortholog of the yeast Sir2 gene, regulates the activity of multiple cellular and systemic life-cycle proteins, including p53,70 forkhead transcription factor FOXO1,71 nuclear factorB,72 proliferator-activated receptor-gamma coactivator-1␣,73 the endothelial isoform of nitric oxide synthase,74 and growth hormone.75 Although data on longevity are awaited, SIRT1overexpressing mice display characteristics similar to calorierestricted mice, being leaner, more metabolically active, and more glucose tolerant, with reductions in blood cholesterol, adipokines, insulin, and fasting glucose.76 In a similar fashion, the administration of resveratrol, a polyphenol found in red wine and a putative SIRT1 activator,77 extends the lifespan of lowerorder species and mice fed a high-calorie diet, opposing the effects of the high-calorie diet in 144 of 153 significantly altered pathways.78 Sirtuin 1 is known to exert multiple salutary effects in the vasculature, promote endothelial proliferation, and protect against endothelial senescence by antagonizing serine/threonine kinase pathways.79 Capillogenesis is also under SIRT1 control via the deacetylation of FOXO1, with genetic loss of SIRT1 leading to defective blood vessel formation and impaired ischemia-induced neovascularization.71 Sirtuin 1 attenuates mitochondrial reactive oxygen species generation in coronary arterial endothelial cells,80 and is at least partially effective against cigarette smoke–induced endothelial oxidative stress.81 In addition, SIRT1 promotes endothelium-dependent vascular relaxation by deacetylating the endothelial isoform of nitric oxide synthase, resulting in increased endothelial nitric oxide,74 a pathway that is likely to be atheroprotective.82 Finally, upstream factors that are known to increase SIRT1 levels and lead to enhanced expression of the endothelial isoform of nitric oxide synthase include caloric restriction74,83 and laminar (atheroprotective) arterial blood flow.84 Sirtuin 1 also exerts beneficial effects on the heart. Resveratrol augments myocardial capillogenesis by induction of vascular endothelial growth factor. Pretreatment with resveratrol before ligation of the left anterior descending coronary artery in rodents was associated with preserved left ventricular function, reduced myocardial infarct size, and increased capillary density in peri-infarct myocardium.85 Furthermore, low to moderate, but not high, SIRT1 cardiac overexpression attenuates agedependent increases in cardiac hypertrophy, apoptosis/fibrosis, cardiac dysfunction, and cellular senescence.86 Reinforcing the relationship between physical activity and cardiovascular health, cardiac SIRT1 levels decline in elderly mice; however, this change is partially reversible with exercise training.87 Sirtuin 1 and Neurological Disease Sirtuin 1 activation is associated with neuroprotective effects across multiple rodent models of primary neurological disease. Although the signaling pathways mediating SIRT1 neuroprotection may be at least partially independent of deacetylase activity and remain to be fully characterized,88 SIRT1 signaling has been shown to be neuroprotective in the setting of axonopathy and neurodegeneration,89 excitotoxicity,90 models of Huntington disease and amyotrophic lateral sclerosis,91,92 and Alzheimer-like degeneration, including the accumulation of secreted and intracellular amyloid- peptides and in vivo rodent Alzheimer disease models.92–96 Of relevance, the involvement of SIRT1 activity in Alzheimer disease is supported by rodent models of Alzheimer disease showing that caloric restriction attenuates disease progression,97 and human epidemiological data indicating that higher caloric intake is associated with an increased risk of Alzheimer disease.98 Compared with elderly persons without Alzheimer disease, human postmortem samples have revealed Figure 4 (Continued). mislocalized nuclear envelope proteins, clustering of nuclear pore complexes, disorganized heterochromatin, epigenetic changes and dramatic dysregulation of gene transcription, increased sensitivity to DNA-damaging agents, and decreased DNA repair capacity. Other potential mechanisms include defective function of the endoplasmic reticulum and decreased stem cell repair and regeneration. Reproduced with minor modification from Capell et al49 with the permission of the publisher. Copyright © 2007, Lippincott, Williams and Wilkins. Kovacic et al Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 that SIRT1 levels are decreased in the parietal cortex of persons with Alzheimer disease but not mild cognitive impairment.99 Sirtuin 1 signaling is also neuroprotective in the setting of neural ischemia and cerebrovascular disease. Activation of SIRT1 attenuates reactive oxygen/nitrogen species formation and inflammation in models of neuronal oxygen-glucose deprivation followed by reperfusion.100,101 Somewhat surprisingly, the genetic neuronal overexpression of SIRT1 in vivo was not protective against middle cerebral artery occlusion.102 However, careful interpretation of these data is required, because these investigators used mice that were high expressers of neuronal SIRT1.102 As discussed above, although moderate SIRT1 cardiac overexpression is protective against age-dependent cardiac dysfunction, high-level cardiac SIRT1 overexpression is detrimental.86 In contrast, resveratrol can reduce cerebral ischemic damage via an SIRT1-dependent signaling pathway involving mitochondrial uncoupling protein 2.103,104 Although resveratrol may also signal via SIRT1-independent pathways,77 we note that this compound is known to reduce rodent infarct size after cerebral ischemia,105 which may involve increased vascular endothelial growth factor production and new vessel formation.106 Resveratrol also exerts beneficial effects in rodent models of subarachnoid hemorrhage.107 Recent studies have suggested there may be significant overlap between sirtuins and several of the other important age-related systems discussed in this review. For example, SIRT6-depleted cells exhibit abnormal telomere structures that resemble defects observed in Werner syndrome. At telomeric chromatin, SIRT6 is involved in a critical deacetylation step that is required for the stable association of WRN, the factor that is mutated in Werner syndrome.69 Although SIRT1 also mediates WRN deacetylation and stability,108,109 SIRT1 also has been shown to interact with telomeric repeat segments, acting as a positive regulator of telomere length and attenuating ageassociated telomere shortening.110 On the other hand, SIRT1 has been implicated in the determination of neural progenitor cell fate. Under oxidative conditions, SIRT1 becomes activated, causing neural progenitors to differentiate into astrocytes, whereas under reducing conditions, progenitor cells differentiated into neurons.111 As a whole, these studies provide encouraging initial data to suggest that the targeted manipulation of SIRT1 signaling may provide an opportunity for retarding or reversing ageassociated detrimental cardiovascular and neurological changes. Not surprisingly, multiple patents have now been filed in relation to SIRT1,112 and numerous clinical trials are being planned or are underway examining the safety and efficacy of resveratrol or other novel SIRT1-activating agents against various conditions, including cancer, Alzheimer disease, insulin resistance, and endothelial dysfunction. Although definitive results remain years away, it is anticipated that preliminary data may be available in the near future, with several studies already having completed enrollment.58 In the interim, as a naturally occurring compound, resveratrol is exempt from the need for Food and Drug Administration– scrutinized quality, safety, and effectiveness data and is freely available in the United States as over-the-counter capsules that contain extracts of red wine and giant knotweed, a plant Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging 1657 found in China. However, after resveratrol received attention on 60 Minutes and The Oprah Winfrey Show, the Internet swelled with unproven health claims and celebrity product endorsements for antiaging and weight-loss pills made from resveratrol; complaints regarding misleading advertising and fraudulent business practices followed soon thereafter.113 In addition, although the multiple studies outlined above attest to the efficacy of resveratrol against aging and multiple age-related pathologies, questions have been raised regarding the accuracy of the original claims that this agent truly increases SIRT1 activity.77 We hope that the need for rigorously conducted, randomized, placebo-controlled trials will not be compromised by this unfortunate public and scientific furor. Other Aspects of Aging Aging is a pervasive process that involves an almost countless number of biological programs. Of necessity, we have presented and discussed only certain aspects of aging that we consider to be timely on the basis of recent advances and/or because they have a major impact on the aging process. In addition to the topics already discussed, numerous additional pathways and systems are of undoubted relevance. Our failure to devote more discussion to this additional material is in no way reflective of any perceived lack of importance, and we urge interested readers to further explore the vast literature on these topics. Additional areas not extensively covered in this review include impaired angiogenesis and a decrease in the capacity for new vessel formation with age114; changes in genetic transcription and translation with age115–117; decreasing renal, hepatic, pulmonary, and other major organ function; the age-related decline in sexrelated hormones118; changes in muscle (sarcopenia) and body mass119; and altered glucose handling.120 Conclusions In this first part of a 2-part review on aging and the vasculature, we have selectively highlighted important advances at the cellular level that appear to be of particular scientific importance or promise with respect to clinical translation. In considering these data, a number of the age-related events presented thus far, such as telomere attrition, accumulation of the progerin protein, and cellular senescence, perhaps indicate a degree of inevitability in the cellular aging process. Furthermore, because these and other age-related processes synergize, overlap, and interact with each other, detrimental cellular effects likely accumulate at an ever-increasing pace. Therefore, the available data seem to suggest that cellular age begets further cellular aging. Indeed, this model of age begetting aging also appears to extend to and synergize with the systemic physiology of the individual, as the aging of one system places further strain on other systems, the aging cell places demands on the body, and the aging body places demands on the cell. In the second part of this review, we will change perspective and consider specific age-associated clinical scenarios and diseases, reviewing relevant new basic and clinical insights that further elucidate these conditions. We will also build on the notion that aging is a highly dynamic process, 1658 Circulation April 19, 2011 representing the result of a constant interplay between cell, organ, system, and organism. Disclosures None. References Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 1. Lim MA, Townsend RR. Arterial compliance in the elderly: its effect on blood pressure measurement and cardiovascular outcomes. Clin Geriatr Med. 2009;25:191–205. 2. US Census Bureau. 2008 National population projections. http:// www.census.gov/population/www/projections/tablesandcharts.html. Accessed September 20, 2010. 3. Williams MA, Fleg JL, Ades PA, Chaitman BR, Miller NH, Mohiuddin SM, Ockene IS, Taylor CB, Wenger NK. Secondary prevention of coronary heart disease in the elderly (with emphasis on patients ⬎ or ⫽75 years of age): an American Heart Association scientific statement from the Council on Clinical Cardiology Subcommittee on Exercise, Cardiac Rehabilitation, and Prevention. Circulation. 2002;105: 1735–1743. 4. Afilalo J, Karunananthan S, Eisenberg MJ, Alexander KP, Bergman H. Role of frailty in patients with cardiovascular disease. Am J Cardiol. 2009;103:1616 –1621. 5. Maroo BP, Lavie CJ, Milani RV. Efficacy and safety of intensive statin therapy in the elderly. Am J Geriatr Cardiol. 2008;17:92–100. 6. Mason CM. Preventing coronary heart disease and stroke with aggressive statin therapy in older adults using a team management model. J Am Acad Nurse Pract. 2009;21:47–53. 7. Ko DT, Mamdani M, Alter DA. Lipid-lowering therapy with statins in high-risk elderly patients: the treatment-risk paradox. JAMA. 2004;291: 1864 –1870. 8. Grundy SM, Cleeman JI, Rifkind BM, Kuller LH. Cholesterol lowering in the elderly population: Coordinating Committee of the National Cholesterol Education Program. Arch Intern Med. 1999;159: 1670 –1678. 9. Calado RT, Young NS. Telomere diseases. N Engl J Med. 2009;361: 2353–2365. 10. Campisi J, d’Adda di Fagagna F. Cellular senescence: when bad things happen to good cells. Nat Rev Mol Cell Biol. 2007;8:729 –740. 11. Olive M, Mellad JA, Beltran LE, Ma M, Cimato T, Noguchi AC, San H, Childs R, Kovacic JC, Boehm M. p21Cip1 modulates arterial wound repair through the stromal cell-derived factor-1/CXCR4 axis in mice. J Clin Invest. 2008;118:2050 –2061. 12. Willeit P, Willeit J, Mayr A, Weger S, Oberhollenzer F, Brandstatter A, Kronenberg F, Kiechl S. Telomere length and risk of incident cancer and cancer mortality. JAMA. 2010;304:69 –75. 13. Blasco MA, Lee HW, Hande MP, Samper E, Lansdorp PM, DePinho RA, Greider CW. Telomere shortening and tumor formation by mouse cells lacking telomerase RNA. Cell. 1997;91:25–34. 14. Leri A, Franco S, Zacheo A, Barlucchi L, Chimenti S, Limana F, Nadal-Ginard B, Kajstura J, Anversa P, Blasco MA. Ablation of telomerase and telomere loss leads to cardiac dilatation and heart failure associated with p53 upregulation. EMBO J. 2003;22:131–139. 15. Blasco MA. Immunosenescence phenotypes in the telomerase knockout mouse. Springer Semin Immunopathol. 2002;24:75– 85. 16. Brouilette S, Singh RK, Thompson JR, Goodall AH, Samani NJ. White cell telomere length and risk of premature myocardial infarction. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2003;23:842– 846. 17. O’Donnell CJ, Demissie S, Kimura M, Levy D, Gardner JP, White C, D’Agostino RB, Wolf PA, Polak J, Cupples LA, Aviv A. Leukocyte telomere length and carotid artery intimal medial thickness: the Framingham Heart Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2008;28: 1165–1171. 18. Satoh M, Minami Y, Takahashi Y, Tabuchi T, Itoh T, Nakamura M. Effect of intensive lipid-lowering therapy on telomere erosion in endothelial progenitor cells obtained from patients with coronary artery disease. Clin Sci (Lond). 2009;116:827– 835. 19. Brouilette SW, Moore JS, McMahon AD, Thompson JR, Ford I, Shepherd J, Packard CJ, Samani NJ. Telomere length, risk of coronary heart disease, and statin treatment in the West of Scotland Primary Prevention Study: a nested case-control study. Lancet. 2007;369: 107–114. 20. Farzaneh-Far R, Cawthon RM, Na B, Browner WS, Schiller NB, Whooley MA. Prognostic value of leukocyte telomere length in patients with stable coronary artery disease: data from the Heart and Soul Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2008;28:1379 –1384. 21. Fitzpatrick AL, Kronmal RA, Gardner JP, Psaty BM, Jenny NS, Tracy RP, Walston J, Kimura M, Aviv A. Leukocyte telomere length and cardiovascular disease in the cardiovascular health study. Am J Epidemiol. 2007;165:14 –21. 22. Farzaneh-Far R, Lin J, Epel ES, Harris WS, Blackburn EH, Whooley MA. Association of marine omega-3 fatty acid levels with telomeric aging in patients with coronary heart disease. JAMA. 2010;303: 250 –257. 23. Wilson WR, Herbert KE, Mistry Y, Stevens SE, Patel HR, Hastings RA, Thompson MM, Williams B. Blood leucocyte telomere DNA content predicts vascular telomere DNA content in humans with and without vascular disease. Eur Heart J. 2008;29:2689 –2694. 24. Chang E, Harley CB. Telomere length and replicative aging in human vascular tissues. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995;92:11190 –11194. 25. Minamino T, Miyauchi H, Yoshida T, Ishida Y, Yoshida H, Komuro I. Endothelial cell senescence in human atherosclerosis: role of telomere in endothelial dysfunction. Circulation. 2002;105:1541–1544. 26. Farsetti A, Grasselli A, Bacchetti S, Gaetano C, Capogrossi MC. The telomerase tale in vascular aging: regulation by estrogens and nitric oxide signaling. J Appl Physiol. 2009;106:333–337. 27. Matthews C, Gorenne I, Scott S, Figg N, Kirkpatrick P, Ritchie A, Goddard M, Bennett M. Vascular smooth muscle cells undergo telomere-based senescence in human atherosclerosis: effects of telomerase and oxidative stress. Circ Res. 2006;99:156 –164. 28. Shelton DN, Chang E, Whittier PS, Choi D, Funk WD. Microarray analysis of replicative senescence. Curr Biol. 1999;9:939 –945. 29. Maier JA, Statuto M, Ragnotti G. Senescence stimulates U937-endothelial cell interactions. Exp Cell Res. 1993;208:270 –274. 30. Kurz DJ, Decary S, Hong Y, Trivier E, Akhmedov A, Erusalimsky JD. Chronic oxidative stress compromises telomere integrity and accelerates the onset of senescence in human endothelial cells. J Cell Sci. 2004; 117:2417–2426. 31. Chen J, Huang X, Halicka D, Brodsky S, Avram A, Eskander J, Bloomgarden NA, Darzynkiewicz Z, Goligorsky MS. Contribution of p16INK4a and p21CIP1 pathways to induction of premature senescence of human endothelial cells: permissive role of p53. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006;290:H1575–H1586. 32. Kovacic JC, Gupta R, Lee AC, Ma M, Fang F, Tolbert CN, Walts AD, Beltran LE, San H, Chen G, St Hilaire C, Boehm M. Stat3-dependent acute Rantes production in vascular smooth muscle cells modulates inflammation following arterial injury in mice. J Clin Invest. 2010;120: 303–314. 33. Werner C, Furster T, Widmann T, Poss J, Roggia C, Hanhoun M, Scharhag J, Buchner N, Meyer T, Kindermann W, Haendeler J, Bohm M, Laufs U. Physical exercise prevents cellular senescence in circulating leukocytes and in the vessel wall. Circulation. 2009;120:2438 –2447. 34. Khan SJ, Pham S, Wei Y, Mateo D, St-Pierre M, Fletcher TM, VazquezPadron RI. Stress-induced senescence exaggerates postinjury neointimal formation in the old vasculature. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2010;298:H66 –H74. 35. Kovacic JC, Boehm M. Resident vascular progenitor cells: an emerging role for non-terminally differentiated vessel-resident cells in vascular biology. Stem Cell Res. 2009;2:2–15. 36. Kovacic JC, Moore J, Herbert A, Ma D, Boehm M, Graham RM. Endothelial progenitor cells, angioblasts, and angiogenesis: old terms reconsidered from a current perspective. Trends Cardiovasc Med. 2008; 18:45–51. 37. Kovacic JC, Muller DW, Harvey R, Graham RM. Update on the use of stem cells for cardiac disease. Intern Med J. 2005;35:348 –356. 38. Moreno PR, Sanz J, Fuster V. Promoting mechanisms of vascular health: circulating progenitor cells, angiogenesis, and reverse cholesterol transport. J Am Coll Cardiol. 2009;53:2315–2323. 39. Bosch-Marce M, Okuyama H, Wesley JB, Sarkar K, Kimura H, Liu YV, Zhang H, Strazza M, Rey S, Savino L, Zhou YF, McDonald KR, Na Y, Vandiver S, Rabi A, Shaked Y, Kerbel R, Lavallee T, Semenza GL. Effects of aging and hypoxia-inducible factor-1 activity on angiogenic cell mobilization and recovery of perfusion after limb ischemia. Circ Res. 2007;101:1310 –1318. 40. Chang EI, Loh SA, Ceradini DJ, Chang EI, Lin SE, Bastidas N, Aarabi S, Chan DA, Freedman ML, Giaccia AJ, Gurtner GC. Age decreases endothelial progenitor cell recruitment through decreases in hypoxia- Kovacic et al 41. 42. 43. 44. 45. 46. Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 47. 48. 49. 50. 51. 52. 53. 54. 55. 56. 57. 58. 59. inducible factor 1alpha stabilization during ischemia. Circulation. 2007; 116:2818 –2829. Laufs U, Werner N, Link A, Endres M, Wassmann S, Jurgens K, Miche E, Bohm M, Nickenig G. Physical training increases endothelial progenitor cells, inhibits neointima formation, and enhances angiogenesis. Circulation. 2004;109:220 –226. Steiner S, Niessner A, Ziegler S, Richter B, Seidinger D, Pleiner J, Penka M, Wolzt M, Huber K, Wojta J, Minar E, Kopp CW. Endurance training increases the number of endothelial progenitor cells in patients with cardiovascular risk and coronary artery disease. Atherosclerosis. 2005;181:305–310. Sandri M, Adams V, Gielen S, Linke A, Lenk K, Krankel N, Lenz D, Erbs S, Scheinert D, Mohr FW, Schuler G, Hambrecht R. Effects of exercise and ischemia on mobilization and functional activation of blood-derived progenitor cells in patients with ischemic syndromes: results of 3 randomized studies. Circulation. 2005;111:3391–3399. Hoetzer GL, Van Guilder GP, Irmiger HM, Keith RS, Stauffer BL, DeSouza CA. Aging, exercise, and endothelial progenitor cell clonogenic and migratory capacity in men. J Appl Physiol. 2007;102: 847– 852. Hennekam RC. Hutchinson-Gilford progeria syndrome: review of the phenotype. Am J Med Genet A. 2006;140:2603–2624. Olive M, Harten I, Mitchell R, Beers JK, Djabali K, Cao K, Erdos MR, Blair C, Funke B, Smoot L, Gerhard-Herman M, Machan JT, Kutys R, Virmani R, Collins FS, Wight TN, Nabel EG, Gordon LB. Cardiovascular pathology in Hutchinson-Gilford progeria: correlation with the vascular pathology of aging. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2010;30: 2301–2309. Stehbens WE, Wakefield SJ, Gilbert-Barness E, Olson RE, Ackerman J. Histological and ultrastructural features of atherosclerosis in progeria. Cardiovasc Pathol. 1999;8:29–39. Eriksson M, Brown WT, Gordon LB, Glynn MW, Singer J, Scott L, Erdos MR, Robbins CM, Moses TY, Berglund P, Dutra A, Pak E, Durkin S, Csoka AB, Boehnke M, Glover TW, Collins FS. Recurrent de novo point mutations in lamin A cause Hutchinson-Gilford progeria syndrome. Nature. 2003;423:293–298. Capell BC, Collins FS, Nabel EG. Mechanisms of cardiovascular disease in accelerated aging syndromes. Circ Res. 2007;101:13–26. Liu B, Wang J, Chan KM, Tjia WM, Deng W, Guan X, Huang JD, Li KM, Chau PY, Chen DJ, Pei D, Pendas AM, Cadinanos J, Lopez-Otin C, Tse HF, Hutchison C, Chen J, Cao Y, Cheah KS, Tryggvason K, Zhou Z. Genomic instability in laminopathy-based premature aging. Nat Med. 2005;11:780 –785. Varela I, Cadinanos J, Pendas AM, Gutierrez-Fernandez A, Folgueras AR, Sanchez LM, Zhou Z, Rodriguez FJ, Stewart CL, Vega JA, Tryggvason K, Freije JM, Lopez-Otin C. Accelerated ageing in mice deficient in Zmpste24 protease is linked to p53 signalling activation. Nature. 2005;437:564 –568. Bergo MO, Gavino B, Ross J, Schmidt WK, Hong C, Kendall LV, Mohr A, Meta M, Genant H, Jiang Y, Wisner ER, Van Bruggen N, Carano RA, Michaelis S, Griffey SM, Young SG. Zmpste24 deficiency in mice causes spontaneous bone fractures, muscle weakness, and a prelamin A processing defect. Proc Natl Acad Sci U S A. 2002;99:13049 –13054. Halaschek-Wiener J, Brooks-Wilson A. Progeria of stem cells: stem cell exhaustion in Hutchinson-Gilford progeria syndrome. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 2007;62:3– 8. Piantanelli L. Cancer and aging: from the kinetics of biological parameters to the kinetics of cancer incidence and mortality. Ann N Y Acad Sci. 1988;521:99 –109. Scaffidi P, Misteli T. Lamin A-dependent misregulation of adult stem cells associated with accelerated ageing. Nat Cell Biol. 2008;10: 452– 459. Scaffidi P, Misteli T. Lamin A-dependent nuclear defects in human aging. Science. 2006;312:1059 –1063. Ragnauth CD, Warren DT, Liu Y, McNair R, Tajsic T, Figg N, Shroff R, Skepper J, Shanahan CM. Prelamin A acts to accelerate smooth muscle cell senescence and is a novel biomarker of human vascular aging. Circulation. 2010;121:2200 –2210. US National Institutes of Health. ClinicalTrials.gov. www.clinicaltrials.gov. Accessed September 20, 2010. Capell BC, Erdos MR, Madigan JP, Fiordalisi JJ, Varga R, Conneely KN, Gordon LB, Der CJ, Cox AD, Collins FS. Inhibiting farnesylation of progerin prevents the characteristic nuclear blebbing of HutchinsonGilford progeria syndrome. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005;102: 12879 –12884. Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging 1659 60. Capell BC, Olive M, Erdos MR, Cao K, Faddah DA, Tavarez UL, Conneely KN, Qu X, San H, Ganesh SK, Chen X, Avallone H, Kolodgie FD, Virmani R, Nabel EG, Collins FS. A farnesyltransferase inhibitor prevents both the onset and late progression of cardiovascular disease in a progeria mouse model. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105: 15902–15907. 61. Varga R, Eriksson M, Erdos MR, Olive M, Harten I, Kolodgie F, Capell BC, Cheng J, Faddah D, Perkins S, Avallone H, San H, Qu X, Ganesh S, Gordon LB, Virmani R, Wight TN, Nabel EG, Collins FS. Progressive vascular smooth muscle cell defects in a mouse model of Hutchinson-Gilford progeria syndrome. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006;103:3250 –3255. 62. McCay CM, Crowell MF, Maynard LA. The effect of retarded growth upon the length of life span and upon the ultimate body size. J Nutr. 1935;10:63–79. 63. Mehta LH, Roth GS. Caloric restriction and longevity: the science and the ascetic experience. Ann N Y Acad Sci. 2009;1172:28 –33. 64. Selman C, Tullet JM, Wieser D, Irvine E, Lingard SJ, Choudhury AI, Claret M, Al-Qassab H, Carmignac D, Ramadani F, Woods A, Robinson IC, Schuster E, Batterham RL, Kozma SC, Thomas G, Carling D, Okkenhaug K, Thornton JM, Partridge L, Gems D, Withers DJ. Ribosomal protein S6 kinase 1 signaling regulates mammalian life span. Science. 2009;326:140 –144. 65. Kenyon CJ. The genetics of ageing. Nature. 2010;464:504 –512. 66. Higashi Y, Sukhanov S, Anwar A, Shai SY, Delafontaine P. IGF-1, oxidative stress and atheroprotection. Trends Endocrinol Metab. 2010; 21:245–254. 67. Sukhanov S, Higashi Y, Shai SY, Vaughn C, Mohler J, Li Y, Song YH, Titterington J, Delafontaine P. IGF-1 reduces inflammatory responses, suppresses oxidative stress, and decreases atherosclerosis progression in ApoE-deficient mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2007;27: 2684 –2690. 68. Taylor DM, Maxwell MM, Luthi-Carter R, Kazantsev AG. Biological and potential therapeutic roles of sirtuin deacetylases. Cell Mol Life Sci. 2008;65:4000 – 4018. 69. Michishita E, McCord RA, Berber E, Kioi M, Padilla-Nash H, Damian M, Cheung P, Kusumoto R, Kawahara TL, Barrett JC, Chang HY, Bohr VA, Ried T, Gozani O, Chua KF. SIRT6 is a histone H3 lysine 9 deacetylase that modulates telomeric chromatin. Nature. 2008;452: 492– 496. 70. Vaziri H, Dessain SK, Ng Eaton E, Imai SI, Frye RA, Pandita TK, Guarente L, Weinberg RA. hSIR2(SIRT1) functions as an NADdependent p53 deacetylase. Cell. 2001;107:149 –159. 71. Potente M, Ghaeni L, Baldessari D, Mostoslavsky R, Rossig L, Dequiedt F, Haendeler J, Mione M, Dejana E, Alt FW, Zeiher AM, Dimmeler S. SIRT1 controls endothelial angiogenic functions during vascular growth. Genes Dev. 2007;21:2644 –2658. 72. Yeung F, Hoberg JE, Ramsey CS, Keller MD, Jones DR, Frye RA, Mayo MW. Modulation of NF-kappaB-dependent transcription and cell survival by the SIRT1 deacetylase. EMBO J. 2004;23:2369 –2380. 73. Nemoto S, Fergusson MM, Finkel T. SIRT1 functionally interacts with the metabolic regulator and transcriptional coactivator PGC-1␣. J Biol Chem. 2005;280:16456 –16460. 74. Mattagajasingh I, Kim CS, Naqvi A, Yamamori T, Hoffman TA, Jung SB, DeRicco J, Kasuno K, Irani K. SIRT1 promotes endotheliumdependent vascular relaxation by activating endothelial nitric oxide synthase. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104:14855–14860. 75. Cohen DE, Supinski AM, Bonkowski MS, Donmez G, Guarente LP. Neuronal SIRT1 regulates endocrine and behavioral responses to calorie restriction. Genes Dev. 2009;23:2812–2817. 76. Bordone L, Cohen D, Robinson A, Motta MC, van Veen E, Czopik A, Steele AD, Crowe H, Marmor S, Luo J, Gu W, Guarente L. SIRT1 transgenic mice show phenotypes resembling calorie restriction. Aging Cell. 2007;6:759 –767. 77. Ledford H. Much ado about ageing. Nature. 2010;464:480 – 481. 78. Baur JA, Pearson KJ, Price NL, Jamieson HA, Lerin C, Kalra A, Prabhu VV, Allard JS, Lopez-Lluch G, Lewis K, Pistell PJ, Poosala S, Becker KG, Boss O, Gwinn D, Wang M, Ramaswamy S, Fishbein KW, Spencer RG, Lakatta EG, Le Couteur D, Shaw RJ, Navas P, Puigserver P, Ingram DK, de Cabo R, Sinclair DA. Resveratrol improves health and survival of mice on a high-calorie diet. Nature. 2006;444:337– 442. 79. Zu Y, Liu L, Lee MY, Xu C, Liang Y, Man RY, Vanhoutte PM, Wang Y. SIRT1 promotes proliferation and prevents senescence through targeting LKB1 in primary porcine aortic endothelial cells. Circ Res. 2010;106:1384 –1393. 1660 Circulation April 19, 2011 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 80. Ungvari Z, Labinskyy N, Mukhopadhyay P, Pinto JT, Bagi Z, Ballabh P, Zhang C, Pacher P, Csiszar A. Resveratrol attenuates mitochondrial oxidative stress in coronary arterial endothelial cells. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2009;297:H1876 –H1881. 81. Csiszar A, Labinskyy N, Podlutsky A, Kaminski PM, Wolin MS, Zhang C, Mukhopadhyay P, Pacher P, Hu F, de Cabo R, Ballabh P, Ungvari Z. Vasoprotective effects of resveratrol and SIRT1: attenuation of cigarette smoke-induced oxidative stress and proinflammatory phenotypic alterations. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2008;294:H2721–H2735. 82. Zhang QJ, Wang Z, Chen HZ, Zhou S, Zheng W, Liu G, Wei YS, Cai H, Liu DP, Liang CC. Endothelium-specific overexpression of class III deacetylase SIRT1 decreases atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice. Cardiovasc Res. 2008;80:191–199. 83. Nisoli E, Tonello C, Cardile A, Cozzi V, Bracale R, Tedesco L, Falcone S, Valerio A, Cantoni O, Clementi E, Moncada S, Carruba MO. Calorie restriction promotes mitochondrial biogenesis by inducing the expression of eNOS. Science. 2005;310:314 –317. 84. Chen Z, Peng IC, Cui X, Li YS, Chien S, Shyy JY. Shear stress, SIRT1, and vascular homeostasis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107: 10268 –10273. 85. Kaga S, Zhan L, Matsumoto M, Maulik N. Resveratrol enhances neovascularization in the infarcted rat myocardium through the induction of thioredoxin-1, heme oxygenase-1 and vascular endothelial growth factor. J Mol Cell Cardiol. 2005;39:813– 822. 86. Alcendor RR, Gao S, Zhai P, Zablocki D, Holle E, Yu X, Tian B, Wagner T, Vatner SF, Sadoshima J. Sirt1 regulates aging and resistance to oxidative stress in the heart. Circ Res. 2007;100:1512–1521. 87. Ferrara N, Rinaldi B, Corbi G, Conti V, Stiuso P, Boccuti S, Rengo G, Rossi F, Filippelli A. Exercise training promotes SIRT1 activity in aged rats. Rejuvenation Res. 2008;11:139 –150. 88. Pfister JA, Ma C, Morrison BE, D’Mello SR. Opposing effects of sirtuins on neuronal survival: SIRT1-mediated neuroprotection is independent of its deacetylase activity. PLoS One. 2008;3:e4090. 89. Araki T, Sasaki Y, Milbrandt J. Increased nuclear NAD biosynthesis and SIRT1 activation prevent axonal degeneration. Science. 2004;305: 1010 –1013. 90. Virgili M, Contestabile A. Partial neuroprotection of in vivo excitotoxic brain damage by chronic administration of the red wine antioxidant agent, trans-resveratrol in rats. Neurosci Lett. 2000;281:123–126. 91. Parker AJ, Arango M, Abderrahmane S, Lambert E, Tourette C, Catoire H, Neri C. Resveratrol rescues mutant polyglutamine cytotoxicity in nematode and mammalian neurons [in French]. Med Sci (Paris). 2005; 21:556 –557. 92. Kim D, Nguyen MD, Dobbin MM, Fischer A, Sananbenesi F, Rodgers JT, Delalle I, Baur JA, Sui G, Armour SM, Puigserver P, Sinclair DA, Tsai LH. SIRT1 deacetylase protects against neurodegeneration in models for Alzheimer’s disease and amyotrophic lateral sclerosis. EMBO J. 2007;26:3169 –3179. 93. Donmez G, Wang D, Cohen DE, Guarente L. SIRT1 suppresses betaamyloid production by activating the alpha-secretase gene ADAM10. Cell. 2010;142:320 –332. 94. Sharma M, Gupta YK. Chronic treatment with trans resveratrol prevents intracerebroventricular streptozotocin induced cognitive impairment and oxidative stress in rats. Life Sci. 2002;71:2489 –2498. 95. Marambaud P, Zhao H, Davies P. Resveratrol promotes clearance of Alzheimer’s disease amyloid-beta peptides. J Biol Chem. 2005;280: 37377–37382. 96. Wang J, Fivecoat H, Ho L, Pan Y, Ling E, Pasinetti GM. The role of Sirt1: at the crossroad between promotion of longevity and protection against Alzheimer’s disease neuropathology. Biochim Biophys Acta. 2009;1804:1690 –1694. 97. Patel NV, Gordon MN, Connor KE, Good RA, Engelman RW, Mason J, Morgan DG, Morgan TE, Finch CE. Caloric restriction attenuates Abeta-deposition in Alzheimer transgenic models. Neurobiol Aging. 2005;26:995–1000. 98. Luchsinger JA, Tang MX, Shea S, Mayeux R. Caloric intake and the risk of Alzheimer disease. Arch Neurol. 2002;59:1258 –1263. 99. Julien C, Tremblay C, Emond V, Lebbadi M, Salem N Jr, Bennett DA, Calon F. Sirtuin 1 reduction parallels the accumulation of tau in Alzheimer disease. J Neuropathol Exp Neurol. 2009;68:48 –58. 100. Wang T, Gu J, Wu PF, Wang F, Xiong Z, Yang YJ, Wu WN, Dong LD, Chen JG. Protection by tetrahydroxystilbene glucoside against cerebral 101. 102. 103. 104. 105. 106. 107. 108. 109. 110. 111. 112. 113. 114. 115. 116. 117. 118. 119. 120. ischemia: involvement of JNK, SIRT1, and NF-kappaB pathways and inhibition of intracellular ROS/RNS generation. Free Radic Biol Med. 2009;47:229 –240. Wang L, Zhang L, Chen ZB, Wu JY, Zhang X, Xu Y. Icariin enhances neuronal survival after oxygen and glucose deprivation by increasing SIRT1. Eur J Pharmacol. 2009;609:40 – 44. Kakefuda K, Fujita Y, Oyagi A, Hyakkoku K, Kojima T, Umemura K, Tsuruma K, Shimazawa M, Ito M, Nozawa Y, Hara H. Sirtuin 1 overexpression mice show a reference memory deficit, but not neuroprotection. Biochem Biophys Res Commun. 2009;387:784 –788. Della-Morte D, Dave KR, DeFazio RA, Bao YC, Raval AP, PerezPinzon MA. Resveratrol pretreatment protects rat brain from cerebral ischemic damage via a sirtuin 1-uncoupling protein 2 pathway. Neuroscience. 2009;159:993–1002. Raval AP, Dave KR, Perez-Pinzon MA. Resveratrol mimics ischemic preconditioning in the brain. J Cereb Blood Flow Metab. 2006;26: 1141–1147. Huang SS, Tsai MC, Chih CL, Hung LM, Tsai SK. Resveratrol reduction of infarct size in Long-Evans rats subjected to focal cerebral ischemia. Life Sci. 2001;69:1057–1065. Dong W, Li N, Gao D, Zhen H, Zhang X, Li F. Resveratrol attenuates ischemic brain damage in the delayed phase after stroke and induces messenger RNA and protein express for angiogenic factors. J Vasc Surg. 2008;48:709 –714. Karaoglan A, Akdemir O, Barut S, Kokturk S, Uzun H, Tasyurekli M, Colak A. The effects of resveratrol on vasospasm after experimental subarachnoidal hemorrhage in rats. Surg Neurol. 2008;70:337–343. Kahyo T, Mostoslavsky R, Goto M, Setou M. Sirtuin-mediated deacetylation pathway stabilizes Werner syndrome protein. FEBS Lett. 2008; 582:2479 –2483. Li K, Casta A, Wang R, Lozada E, Fan W, Kane S, Ge Q, Gu W, Orren D, Luo J. Regulation of WRN protein cellular localization and enzymatic activities by SIRT1-mediated deacetylation. J Biol Chem. 2008;283:7590 –7598. Palacios JA, Herranz D, De Bonis ML, Velasco S, Serrano M, Blasco MA. SIRT1 contributes to telomere maintenance and augments global homologous recombination. J Cell Biol. 2010;191:1299 –1313. Prozorovski T, Schulze-Topphoff U, Glumm R, Baumgart J, Schroter F, Ninnemann O, Siegert E, Bendix I, Brustle O, Nitsch R, Zipp F, Aktas O. Sirt1 contributes critically to the redox-dependent fate of neural progenitors. Nat Cell Biol. 2008;10:385–394. Pillarisetti S. A review of Sirt1 and Sirt1 modulators in cardiovascular and metabolic diseases. Recent Pat Cardiovasc Drug Discov. 2008;3: 156 –164. Arnquist S. With resveratrol, buyer beware. New York Times. August 18, 2009. http://www.nytimes.com/2009/08/18/science/18ageside. html?_r⫽1&scp⫽12&sq⫽arnquist&st⫽cse. Accessed March 16, 2011. Rivard A, Fabre JE, Silver M, Chen D, Murohara T, Kearney M, Magner M, Asahara T, Isner JM. Age-dependent impairment of angiogenesis. Circulation. 1999;99:111–120. Nakamura T, Fox-Robichaud A, Kikkawa R, Kashiwagi A, Kojima H, Fujimiya M, Wong NC. Transcription factors and age-related decline in apolipoprotein A-I expression. J Lipid Res. 1999;40:1709 –1718. Prall WC, Czibere A, Jager M, Spentzos D, Libermann TA, Gattermann N, Haas R, Aivado M. Age-related transcription levels of KU70, MGST1 and BIK in CD34⫹ hematopoietic stem and progenitor cells. Mech Ageing Dev. 2007;128:503–510. de Magalhaes JP, Curado J, Church GM. Meta-analysis of age-related gene expression profiles identifies common signatures of aging. Bioinformatics. 2009;25:875– 881. Smiley DA, Khalil RA. Estrogenic compounds, estrogen receptors and vascular cell signaling in the aging blood vessels. Curr Med Chem. 2009;16:1863–1887. Vinciguerra M, Musaro A, Rosenthal N. Regulation of muscle atrophy in aging and disease. Adv Exp Med Biol. 2010;694:211–233. Iozzo P, Beck-Nielsen H, Laakso M, Smith U, Yki-Jarvinen H, Ferrannini E. Independent influence of age on basal insulin secretion in nondiabetic humans: European Group for the Study of Insulin Resistance. J Clin Endocrinol Metab. 1999;84:863– 868. KEY WORDS: aging 䡲 cardiovascular diseases 䡲 risk factors 䡲 vascular calcification-associated factor, human 䡲 stem cells Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging: Part 1 of a 2-Part Review Jason C. Kovacic, Pedro Moreno, Vladimir Hachinski, Elizabeth G. Nabel and Valentin Fuster Circulation. 2011;123:1650-1660 doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.110.007021 Downloaded from http://circ.ahajournals.org/ by guest on June 17, 2017 Circulation is published by the American Heart Association, 7272 Greenville Avenue, Dallas, TX 75231 Copyright © 2011 American Heart Association, Inc. All rights reserved. Print ISSN: 0009-7322. Online ISSN: 1524-4539 The online version of this article, along with updated information and services, is located on the World Wide Web at: http://circ.ahajournals.org/content/123/15/1650 Data Supplement (unedited) at: http://circ.ahajournals.org/content/suppl/2016/04/13/123.15.1650.DC1 Permissions: Requests for permissions to reproduce figures, tables, or portions of articles originally published in Circulation can be obtained via RightsLink, a service of the Copyright Clearance Center, not the Editorial Office. Once the online version of the published article for which permission is being requested is located, click Request Permissions in the middle column of the Web page under Services. Further information about this process is available in the Permissions and Rights Question and Answer document. Reprints: Information about reprints can be found online at: http://www.lww.com/reprints Subscriptions: Information about subscribing to Circulation is online at: http://circ.ahajournals.org//subscriptions/ Page 31 Mise au point en médecine cardiovasculaire Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement Première partie d’une synthèse en deux parties Jason C. Kovacic, MD, PhD ; Pedro Moreno, MD ; Vladimir Hachinski, MD, DSc ; Elizabeth G. Nabel, MD ; Valentin Fuster, MD, PhD alors que la réduction relative du risque cardiovasculaire induite par le traitement hypolipémiant est, semble-t-il, comparable que le patient soit jeune ou âgé, la diminution absolue, c’est-à-dire la proportion d’événements cardiovasculaires évités, paraît être nettement supérieure chez les patients âgés.8 Cela doit nous inciter à ne pas perdre de vue que, même si nombre d’avancées passionnantes susceptibles de nous aider à combattre les ravages de la vieillesse semblent être parvenues au stade de la mise en application clinique, pour l’heure, les médecins doivent s’attacher à faire bénéficier tous leurs patients âgés des meilleurs soins médicaux. Dans cet article de synthèse en deux parties, nous traitons des altérations biologiques importantes dont l’appareil cardiovasculaire est l’objet du fait du vieillissement ainsi que de leur contribution aux événements cliniques. Nous passons également en revue les domaines dans lesquels on peut espérer, en se montrant un tant soit peu optimiste, que les progrès scientifiques accomplis débouchent sur des stratégies cliniques ciblées à même de contrecarrer les inquiétantes conséquences de l’épidémie de vieillissement en termes de morbidité, de mortalité et de dépenses de santé. Le lecteur doit être prévenu de ce que notre propos n’est pas de faire ici l’examen exhaustif de tous les acteurs biologiques potentiellement impliqués dans cette mécanique complexe. Nous avons préféré nous concentrer sur de nouveaux aspects importants de la biologie fondamentale et cellulaire et de la médecine clinique qui sont d’un grand intérêt en la matière. Dans cette première partie, nous nous intéresserons aux progrès majeurs accomplis dans la compréhension du processus de sénescence cellulaire grâce aux travaux de recherche fondamentale et nous tenterons d’étendre ces observations à l’appareil vasculaire du sujet âgé. La longévité est une affaire de vaisseaux, parfaitement résumée par l’axiome stipulant que nous avons l’âge de nos artères. Pour une majorité d’entre nous, c’est principalement ou secondairement par cette porte que la mort arrive. L’apparition de ce que l’on peut qualifier d’artériosclérose physiologique dépend, en premier lieu, de la qualité des tissus artériels dont nous avons hérité et, accessoirement, du degré d’usure auquel nous les avons soumis. —Sir William Osler, 18911 n 2030, lorsque l’ensemble de la génération des babyboomers sera âgée de 65 ans ou plus, près d’un Américain sur cinq aura dépassé cet âge. On estime, en outre, que, d’ici à 2050, le nombre d’individus appartenant à cette tranche d’âge devrait plus que doubler, passant de 38,7 millions en 2008 à quelques 88,5 millions (Figure 1).2 Dans le même temps, la population âgée de 85 ans ou plus devrait plus que tripler, son effectif passant de 5,4 millions en 2008 à 19 millions en 2050.2 Ce vieillissement de la population aura pour conséquence une augmentation considérable du nombre des personnes exposées à un risque d’événements cardiovasculaires, en particulier thromboses liées à l’athérosclérose, accidents vasculaires cérébraux, infarctus du myocarde et insuffisance cardiaque. L’importance de ces projections est soulignée par le fait que, de nos jours, bien que les octogénaires ne représentent que 5 % de la population des Etats-Unis, ils rendent compte de 20 % des hospitalisations pour infarctus du myocarde et de 30 % des décès secondaires à un tel événement.3 E Une inquiétante épidémie de vieillissement Bien qu’ils encourent un plus grand risque d’événement cardiaque, les patients âgés sont moins susceptibles de bénéficier d’un traitement approprié. Ce paradoxe tient peut-être au fait que les sujets âgés atteints d’affections cardiovasculaires sont souvent fragilisés.4 De tels patients peuvent, dès lors, se voir privés d’un traitement efficace en raison du risque accru d’effets indésirables que les médecins sont portés à redouter, en particulier en cas d’instauration d’un protocole médicamenteux complexe.5–7 A titre d’exemple, Raccourcissement des télomères et sénescence cellulaire Mécanismes sous-tendant la fonction des télomères et de la télomérase En 2009, le prix Nobel de physiologie ou médecine a été décerné aux Drs Blackburn, Greider et Szostak pour avoir découvert comment les télomères et une enzyme, la télomérase, Institut Cardiovasculaire Zena and Michael A. Wiener (J.C.K., P.M., V.F.) et Centre de Santé Cardiovasculaire Marie-Josée et Henry R. Kravis (V.F.), Faculté de Médecine du Mont Sinaï, New York, New York, Etats-Unis ; Service de Neurologie Clinique, Université de l’Ontario occidental, London, Ontario, Canada (V.H.) ; Brigham and Women’s Hospital, Boston, Massachusetts, Etats-Unis (E.G.N.) ; et Centre National d’Investigations Cardiovasculaires (CNIC), Madrid, Espagne (V.F.). Cet article constitue la première partie d’une synthèse en deux parties. Correspondance : Valentin Fuster, MD, PhD, Mount Sinai School of Medicine, One Gustave L. Levy Place, Box 1030, New York, NY 10029, Etats-Unis. E-mail : [email protected] (Traduit de l’anglais: Cellular Senescence, Vascular Disease, and Aging: Part 1 of a 2-Part Review. Circulation. 2011;123:1650–1660.) © 2012 Lippincott, Williams & Wilkins Circulation est disponible sur http://circ.ahajournals.org 31 09:37:07:12:11 Page 31 Page 32 32 Circulation Janvier 2012 Figure 1. Projections démographiques de la population des Etats-Unis en fonction de l’âge et du sexe en 2010 (graphique du haut), 2030 (graphique du milieu) et 2050 (graphique du bas). La cohorte des baby-boomers (Baby Boom) est également prise en compte. Source : service de la population, bureau du recensement des Etats-Unis.2 protègent les chromosomes pendant la réplication de l’ADN. En bref, étant donné que ce processus réclame la présence d’un premier point d’ancrage sur le brin d’ADN, les courtes séquences situées à l’extrémité des segments d’ADN en voie de réplication ne sont pas synthétisées pendant la division 09:37:07:12:11 Page 32 cellulaire (et sont donc perdues). Du fait de cette anomalie de réplication de leurs portions terminales, les brins d’ADN nouvellement synthétisés sont plus courts que la matrice originelle. Si cela n’était pas corrigé, du matériel génétique serait perdu à chaque division cellulaire. Les télomères et la Page 33 Kovacic et al Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement 33 Figure 2. Structure d’un télomère et aspect microscopique. A, Représentation schématique de la structure d’un télomère et localisation sous-cellulaire. Les télomères sont situés aux extrémités des chromosomes en bâtonnets ; chez l’Homme, ils sont constitués de plusieurs centaines ou milliers de séquences d’ADN répétées en tandem, représentées par les hexamères TTAGGG dans le brin avancé et CCCTAA dans le brin retardé. L’ADN télomérique est également protégé par d’autres protéines protectrices collectivement désignées sous le nom de shelterine (TRF1, TRF2, TIN2, POT1, TPP1). L’extrémité 3’ du brin télomérique avancé comporte une extension simple brin qui se replie sur elle-même pour venir s’insérer dans l’hélice double brin. B, L’hybridation in situ en fluorescence permet la visualisation microscopique directe des télomères aux extrémités des chromosomes en métaphase (quatre signaux télomériques par chromosome). Reproduit de Calado et Young9 avec l’autorisation de l’éditeur. Copyright © 2009, Massachusetts Medical Society. télomérase assurent cette fonction correctrice en fournissant une matrice répétitive permettant la réparation enzymatique des extrémités des chromosomes. Les télomères peuvent être assimilés à des sortes de capuchons destinés à préserver le matériel génétique au niveau des portions terminales des chromosomes linéaires (Figure 2).9 Longtemps, le raccourcissement progressif des télomères demeure sans effet sur les cellules, lesquelles continuent à fonctionner normalement. Toutefois, lorsqu’ils deviennent trop courts, les télomères commandent l’arrêt de la multiplication des cellules. Celles-ci entrent alors en sénescence (du latin senex signifiant vieillesse ou vieillard), ce qui implique qu’elles sont désormais dans l’incapacité de se diviser. Pour prévenir ce phénomène de sénescence, les cellules germinales et certaines cellules somatiques produisent de la télomérase, une enzyme qui catalyse la synthèse d’ADN afin de maintenir la longueur des télomères. Au niveau cellulaire, la sénescence peut être un important mécanisme de protection à l’égard de la tumorigenèse, caractérisé par un arrêt de la prolifération, une résistance à l’apoptose et une modification de l’expression des gènes, dont la transcription des inhibiteurs p21Cip1 et/ou p16 des kinases cycline-dépendantes constitue l’exemple type (Figure 3).10,11 Toutefois, le rôle joué par la sénescence dans la tumorigenèse fait quelque peu débat dans la mesure où, à l’échelon individuel, le raccourcissement des télomères leucocytaires augmente le risque de développement des cancers de tous types.12 Les modèles fondés sur l’emploi de souris dépourvues de télomérase ont néanmoins permis de mieux comprendre la manière particulière dont ce système fonctionne. Au fil des générations, ces souris privées de télomérase finissent par ne plus posséder de télomères 09:37:07:12:11 Page 33 décelables,13 deviennent stériles et développent des troubles hématopoïétiques et une insuffisance cardiaque14 ; elles contractent, en outre, diverses pathologies liées à l’âge portant sur les tissus hautement prolifératifs, dont le système immunitaire.15 Relations entre la fonction des télomères et de la télomérase et les événements athérothrombotiques Plusieurs syndromes cliniques sont désormais directement rattachés à certains troubles primitifs affectant les télomères, dont certaines formes d’insuffisance médullaire, d’anémie aplasique, de dyskeratosis congenita et de fibrose pulmonaire.15 Mais quelle preuve avons-nous que le raccourcissement des télomères joue un rôle dans la pathologie cardiovasculaire et le vieillissement vasculaire ? Des études cas-témoins transversales16–18 et des études de cohortes longitudinales19–21 ont établi un lien entre l’augmentation de l’incidence des événements coronaires et des manifestations d’athérosclérose et le raccourcissement des télomères dans les leucocytes circulants. Il a ainsi été établi que la longueur moyenne des télomères leucocytaires diminue d’environ 6 à 9 % par décennie19 ; plusieurs de ces études ont, en outre, montré que ce raccourcissement des télomères est fortement prédictif de la survenue de futurs événements cardiovasculaires, ce marqueur semblant, de plus, conserver sa puissance prédictive même après ajustement prenant en compte les facteurs de risque cliniques, inflammatoires et échocardiographiques conventionnels.20 Il apparaît, par ailleurs, que l’administration de pravastatine est à même d’atténuer l’augmentation du risque cardiovasculaire lié à l’attrition des télomères, qu’un traitement hypolipémiant Page 34 34 Circulation Janvier 2012 Figure 3. La sénescence cellulaire. A, Le processus peut être déclenché par un stress cellulaire extrême et semble constituer un important mécanisme de protection contre la transformation maligne des cellules. Etant donné qu’elle conduit à faire évoluer une cellule apte à se reproduire vers un état d’incapacité à la multiplication, par définition, la sénescence n’affecte que les cellules dotées d’une activité mitotique. Comme le montre la figure, les facteurs de stress à l’origine de l’évolution vers la sénescence sont représentés par le raccourcissement ou l’altération fonctionnelle des télomères, les lésions non télomériques de l’ADN, les signaux mitogènes puissants (tels que ceux produits par les substances oncogènes) et divers autres stimuli néfastes. Souvent, mais pas constamment, ces facteurs de stress induisent l’activation de la voie de l’un des gènes suppresseurs de tumeur p53-p21Cip1 ou p16. Les caractéristiques des cellules sénescentes varient selon le type cellulaire et le ou les événements déclenchants.10 B, La délétion du gène p21Cip1 impliqué dans la sénescence au sein des cellules musculaires lisses vasculaires (CMLV) induit des effets à l’opposé du vieillissement, à savoir une augmentation de la prolifération et de l’apoptose cellulaires. Sont ici figurés, à gauche, les taux de croissance in vitro respectifs de CMLV possédant le gène p21Cip1 (p21+/+) et qui en sont dépourvues (p21–/–) et, à droite, les pourcentages de cellules en apoptose (prenant la coloration par l’annexine V) après application d’un stimulus apoptotique (H2O2) pendant 1 heure (*p <0,05 et ***p <0,001 pour les comparaisons entre cellules p21+/+ et p21–/–). Reproduit d’Olive et al11 avec l’autorisation de l’éditeur. Copyright © 2008, American Society for Clinical Investigation. énergique par l’atorvastatine peut stopper cette dernière au sein des cellules souches endothéliales18 et que, chez les patients coronariens stables, la vitesse de raccourcissement des télomères est inversement proportionnelle au taux initial d’acides gras oméga-3.22 Une petite série de données montre également qu’il existe, dans les cellules des parois aortiques pathologiques, un raccourcissement télomérique qui n’est pas observé dans celles des parois aortiques saines.23 Plus intéressant encore, le maintien de la longueur des télomères pourrait jouer un rôle dans l’un des grands mystères vasculaires qui intriguent les cliniciens depuis plusieurs dizaines d’années : pourquoi l’artère mammaire interne est-elle relativement épargnée par l’athérosclérose ? Dans une étude ex vivo chez l’Homme, Chang et Harley24 ont, en effet, montré que l’attrition télomérique est plus importante au niveau de l’intima d’une artère iliaque que de celle d’une artère mammaire interne et que la différence de longueur des télomères entre ces deux sites augmente avec l’âge des patients. Il a été démontré depuis que, comparativement à celles des artères mammaires internes, les cellules endothéliales des artères coronaires humaines sont sujettes à un processus de sénescence beaucoup plus marqué et qu’il est possible de corriger ce phénotype sénescent en augmentant l’activité de la télomérase.25 Outre l’âge, les statines et la localisation anatomique des vaisseaux, d’autres facteurs influent sur la longueur des télomères, l’activité de la télomérase et la sénescence des cellules vasculaires. Il s’agit de l’isoforme endothéliale de la monoxyde d’azote synthétase, du récepteur estrogénique α26 09:37:07:12:11 Page 34 et du stress oxydatif.27 Des données ex vivo chez l’Homme ont notamment montré que le stress oxydatif accélère tout à la fois l’usure des télomères, la sénescence des cellules musculaires lisses vasculaires et la progression des lésions d’athérosclérose.27 L’expression de molécules d’adhésion intercellulaire de type 1 par les cellules endothéliales augmente avec leur sénescence,25,28 ce qui accroît l’adhésion des monocytes à l’endothélium, élément clé de l’aggravation de l’athérosclérose.29 Il semblerait que, en augmentant la production d’espèces réactives de l’oxygène, la fixation des monocytes engendre une boucle de rétroaction positive, entraînant un raccourcissement des télomères et une aggravation de la sénescence des cellules endothéliales.30 Certaines observations suggèrent, en outre, que les inhibiteurs p21Cip1 et p53 des kinases cycline-dépendantes, dont on sait qu’ils sont d’importants médiateurs de l’inflammation vasculaire, joueraient également un rôle clé dans le phénotype de sénescence des cellules vasculaires.11,31,32 Chez le rongeur, l’exercice physique stimule l’activité de la télomérase au niveau de l’aorte thoracique et des mononucléaires circulants tout en réduisant parallèlement l’expression de p53 et des autres médiateurs de la sénescence et de l’apoptose des cellules vasculaires.33 En étendant ces données animales à l’Homme, un lien a pu être établi entre l’entraînement physique et la pérennisation de l’activité de la télomérase et de la longueur des télomères.33 Pour finir, une observation quelque peu paradoxale, mais qui pourrait s’expliquer par l’altération de l’expression des cytokines, réside dans le fait que la sénescence des cellules musculaires lisses vasculaires contribue Page 35 Kovacic et al Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement à multiplier par deux la formation de néo-intima après un traumatisme vasculaire.34 Considérée dans sa globalité, notre connaissance naissante de la sénescence cellulaire et de la fonction exercée par les télomères met d’ores et déjà en lumière l’importance de ce système dans l’évolution du phénotype de vieillissement vasculaire, et il ne fait aucun doute que, si nous parvenions à agir sur ce système à des fins thérapeutiques, nous accomplirions un progrès décisif dans le traitement des affections athérothrombotiques du sujet âgé. Cellules souches vasculaires et progérine Diminution du nombre et de la fonction des cellules souches au cours du vieillissement Nous avons précédemment examiné les rôles majeurs que jouent vraisemblablement la moelle osseuse et les cellules souches vasculaires dans la formation de nouveaux vaisseaux (néo-capillarogenèse) et dans le maintien de l’homéostasie vasculaire.35–38 Même si les opinions divergent concernant la définition, les caractéristiques et l’origine précises des progéniteurs endothéliaux et vasculaires, leur importance globale est un fait désormais acquis.36 Une notion commence à émerger de la somme croissante de données émanant de la recherche, qui est que, avec l’avancée en l’âge, le nombre des cellules souches et certaines de leurs fonctionnalités diminuent ou s’épuisent. On pense que cela altère la capacité de ces cellules à assurer l’homéostasie et la réparation de l’appareil vasculaire, ce qui, à terme, se solde par une aggravation des lésions d’athérosclérose et vasculaires liées à l’âge. Bien que l’usure des télomères et la sénescence cellulaire qui en découle soient parties prenantes dans la dysfonction des cellules souches en rapport avec l’âge (voir plus haut), d’autres phénomènes jouent également un rôle. On sait, par exemple, que la production de cytokines angiogéniques diminue avec l’âge et que la migration des cellules souches vers les zones d’ischémie peut être altérée chez le sujet âgé du fait d’une disparition de l’activation et de la stabilisation du facteur 1α inductible normalement engendrées par l’hypoxie.39,40 Il semblerait toutefois que l’exercice physique ait pour effet d’atténuer certaines des altérations qui affectent le nombre et la fonction des cellules souches et des progéniteurs du fait du vieillissement. Plusieurs études ont, en effet, montré que, chez les patients atteints de maladie coronaire ou qui présentent des facteurs de risque cardiovasculaire, la pratique d’une activité physique sur une période de un à trois mois contribue à augmenter significativement le nombre et l’activité fonctionnelle des progéniteurs endothéliaux circulants.41,42 Des résultats comparables ont été rapportés chez des patients artéritiques auxquels il avait été demandé d’effectuer pendant 28 jours des exercices physiques poursuivis jusqu’à l’apparition de crampes dans les membres inférieurs (claudication).43 Il n’est pas exclu que ces effets bénéfiques puissent être étendus aux personnes âgées en bonne santé mais sédentaires, dans la mesure où, chez des sujets âgés de 50 ans et plus qui étaient jusqu’alors inactifs, un entraînement physique d’une durée de trois mois a permis d’accroître la capacité des progéniteurs endothéliaux à former des colonies et à migrer.44 09:37:07:12:11 Page 35 35 Eclairages apportés par les syndromes de Werner et de Hutchinson-Gilford sur le vieillissement physiologique Notre compréhension des mécanismes présidant à l’altération fonctionnelle des cellules souches et au vieillissement vasculaire a fortement progressé grâce à de récentes études menées sur les affections responsables d’un vieillissement prématuré, telles que le syndrome de Werner et le syndrome de Hutchinson-Gilford (SHG), également appelé progéria. Les individus atteints d’un SHG présentent un phénomène de sénescence accélérée et inexorable, et décèdent, le plus souvent à la suite d’un infarctus du myocarde ou d’un événement vasculaire cérébral, à un âge moyen de 13 ans.45 Sur le plan histologique, le SHG se caractérise par une raréfaction plus ou moins marquée des cellules musculaires lisses dans la média des vaisseaux et par un processus d’athérosclérose s’accompagnant d’une fibrose massive.46,47 Ce syndrome découle habituellement d’une substitution mononucléotidique C → T survenue au niveau de l’exon 11 du gène de la lamine A, ce qui détermine l’activation d’un site d’épissage cryptique (caché) et la synthèse d’une pré-lamine A ayant perdu une cinquantaine d’acides aminés au voisinage de sa portion carboxy-terminale.48 Cette pré-lamine A mutante fait l’objet d’une farnésylation irréversible qui l’empêche de subir le clivage enzymatique final nécessaire pour donner naissance à la lamine A, qui constitue la forme active. Au lieu de cela, la protéine mutante, à laquelle a été donné le nom de progérine, s’accumule et demeure attachée à la membrane nucléaire, agissant sur un mode gain de fonction négatif dominant, ce qui finit par compromettre l’intégrité structurale et transcriptionnelle du noyau (Figure 4).49 Les cellules provenant de souris Zmpste24–/–, qui est un modèle de SHG, présentent une sénescence prématurée car elles sont incapables de réparer les dommages causés à leur ADN.50 Toutefois, chez ces souris Zmpste24–/–, la délétion du régulateur du cycle cellulaire p53, déjà mentionné comme étant un facteur de sénescence des cellules, corrige partiellement le phénotype de pseudo-SHG et contribue à allonger l’espérance de vie des animaux.51 Les souris hétérozygotes pour la délétion (Zmpste24+/–) présentent un phénotype moins sévère que les animaux homozygotes (Zmpste24–/–), ce qui est en faveur d’un effet-dose.52 La sénescence cellulaire accélérée observée dans les modèles de SHG et de pseudo-SHG a été mise en parallèle avec le fait que le SHG touche les organes dont les cellules se renouvellent à un rythme rapide (à savoir la peau, les cheveux et les poils, le squelette, les tissus sous-cutanés et adipeux). Cela a conduit à supposer que la régénération des tissus sujets à un renouvellement cellulaire intense, dont les vaisseaux, était peut-être amoindrie du fait de la déplétion en cellules souches et en progéniteurs.53 Cette hypothèse apparaît d’autant plus plausible que le SHG n’est nullement pourvoyeur de malignité ; il semble, en fait, que les degrés élevés de sénescence cellulaire et d’apoptose aient pour effets d’épuiser les réserves en cellules souches et d’abolir tout processus malin.53 Dans la mesure où il apparaîtrait que les processus malins soient fréquemment sous-tendus par une transformation des cellules souches, la théorie selon laquelle, chez le sujet âgé, les stocks de ces cellules seraient fortement Page 36 36 Circulation Janvier 2012 Figure 4. Anomalies génétiques et nucléaires dans le syndrome de Hutchinson-Gilford (SHG). A, Le SHG est dû à la substitution d’une base C par une T en position 1824 au sein du gène LMNA. Cette mutation ne modifie pas l’acide aminé codé (la glycine), mais induit l’activation d’un site d’épissage cryptique siégeant à une distance de 150 nucléotides en amont de la jonction normale de l’épissage entre les exons 11 et 12. Le précurseur de la lamine A, la pré-lamine A, subit une série de modifications post-traductionnelles, consistant en une farnésylation de son motif CAAX C-terminal (CSIM dans le cas présent) par la farnésyltransférase (FTase), un clivage des trois acides aminés terminaux (SIM) par Zmpste24 et une carboxyméthylation par l’isoprénylcystéine carboxyméthyltransférase (ICMT). Un second et dernier clivage par Zmpste24 supprime les 15 acides aminés terminaux et le groupement farnésyl, ce qui permet l’incorporation de la lamine A mature à la lamina nucléaire. En revanche, du fait de la perte de 50 acides aminés, la progérine ne possède plus le second site de clivage et demeure donc définitivement farnésylée. B, Mécanismes supposés à l’origine de la maladie : le noyau cellulaire dans le SHG. L’opinion qui prévaut est que, du fait de sa farnésylation irréversible, la progérine provoque la rupture de la lamina ainsi que de multiples autres anomalies nucléaires, telles qu’une vacuolisation du noyau, une altération des interactions avec les autres filaments intermédiaires nucléaires et cytosoliques, une localisation 09:37:07:12:11 Page 36 Page 37 Kovacic et al Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement diminués, voire épuisés est confortée par le fait que, chez l’individu normal, l’incidence des affections malignes culmine entre 40 à 80 ans pour ensuite diminuer.54 Les travaux de Scaffidi et Misteli55 ont apporté de puissants arguments à l’appui de ces concepts. Ces investigateurs ont, en effet, découvert que l’expression de la progérine induit l’activation de la voie de signalisation du facteur Notch, ce qui entraîne l’abolition de la régulation physiologique des cellules souches mésenchymateuses, leur différentiation anormale ainsi qu’une détérioration progressive des fonctions tissulaires. De plus, il a récemment été établi que les cellules des sujets sains mais d’âge avancé (81 à 96 ans) expriment la progérine (c’est-à-dire la protéine mutante), cela donnant lieu à une localisation aberrante de la lamine A et à des anomalies nucléaires du même type que celles observées dans le SHG.56 Elément méritant d’être souligné, une accumulation de pré-lamine A a également été décrite dans les vaisseaux et les cellules musculaires lisses vasculaires de personnes âgées en bonne santé, ce qui a conduit à proposer d’employer le taux de pré-lamine A comme un nouveau marqueur du vieillissement de ces cellules.46,57 Au total, la mutation du gène de la lamine A peut être utilisée pour illustrer l’importance de certaines composantes du vieillissement aussi bien normal que pathologique, dont, en particulier, l’augmentation de la sénescence cellulaire et l’altération de la fonctionnalité des cellules souches, de sorte que les mécanismes moléculaires responsables du vieillissement prématuré qui caractérise le SHG s’exercent également à un faible degré sur les cellules d’apparence saine mais âgées.56 On attend avec impatience les résultats d’une étude clinique de phase II menée avec le lonafarnib chez des patients atteints de SHG.58 Ce médicament est un inhibiteur de la farnésyltransférase qui bloque la farnésylation post-traductionnelle de la pré-lamine A, les études précliniques ayant démontré que l’inhibition de ce processus retarde le fonctionnement aberrant de la progérine.59 En effet, chez la souris transgénique qui surexprime la progérine humaine, l’administration d’un inhibiteur de la farnésyltransférase bloque le développement et la progression du trouble vasculaire dans ce modèle murin qui reproduit le phénotype de l’atteinte cardiovasculaire humaine.60,61 Si cet essai clinique aboutit à des résultats favorables, même partiels, il constituera une importante avancée dans la prise en charge des patients atteints de SHG et ouvrira peut-être sur une exploration plus poussée du rôle joué par ces mécanisme dans le processus de vieillissement normal. Obésité, restriction calorique et sirtuines Le maintien d’un poids corporel s’inscrivant dans les normes est primordial pour prévenir la morbidité et la mortalité cardiovasculaires au cours de l’avancée en âge. Toute personne lisant cet article sait parfaitement que l’obésité contribue à augmenter l’incidence de l’hypertension artérielle, du diabète et des dyslipidémies, qui sont autant de facteurs 37 connus pour engendrer des troubles cardiovasculaires. De plus, l’obésité concourt indirectement à l’installation de plusieurs autres facteurs de risque cardiovasculaire, car elle fait le lit du syndrome d’apnées du sommeil, entrave l’activité physique, accroît la sédentarité et compromet le fonctionnement du système immunitaire. La restriction calorique allonge la vie Un développement passionnant des données exposées plus haut est que la restriction calorique est connue pour allonger la vie des organismes vivants depuis la simple levure jusqu’aux mammifères.62 Bien qu’il soit extrêmement difficile à démontrer chez l’Homme, ce phénomène a été mis en évidence dans de multiples espèces différentes ; de plus, des observations anecdotiques recueillies chez des personnes pratiquant une ascèse à fondement religieux tendent à indiquer que cette longévité s’applique tout autant aux humains qui limitent leurs apports caloriques. La restriction calorique pourrait avoir d’autres effets bénéfiques consistant notamment en une plus grande agilité d’esprit, une meilleure fonction immunitaire et une persistance de l’apparence de jeunesse.63 Plusieurs systèmes de signalisation jouent vraisemblablement un rôle dans l’effet anti-âge de la restriction calorique, dont la voie de la cible de la rapamycine (aujourd’hui appelée sirolimus) sensible aux nutriments. Selman et al64 ont démontré que, chez la souris, la délétion de la protéine kinase 1 de la sous-unité ribosomale S6, qui est à la fois un médiateur d’aval de cette voie et un transducteur des signaux anaboliques qui régulent la croissance et le métabolisme des cellules, induit des profils d’expression génique similaires à ceux associés à la restriction calorique, dans le sens où elle allonge la durée de vie des animaux et les protège des maladies liées à l’âge. Le fait que l’inhibition de la voie de la cible de la rapamycine par cette dernière soit à même d’augmenter la longévité a des implications majeures dans la mesure où ce médicament est d’ores et déjà employé en tant qu’immunosuppresseur. Une importante réserve doit toutefois être exprimée, car, pour l’heure, on ignore si l’immunosuppression induite par la rapamycine n’aurait pas, à terme, des effets néfastes si ce médicament était administré au long cours pour allonger la vie de personnes par ailleurs en bonne santé. Récemment, de très solides données ont été publiées, selon lesquelles la diminution de la signalisation du facteur de croissance pseudo-insulinique constituerait vraisemblablement un autre mécanisme contribuant à la longévité associée à la restriction calorique.65 Il y a toutefois là un paradoxe qu’il y a lieu d’expliquer, car, si l’inhibition du facteur de croissance pseudo-insulinique de type 1 est potentiellement à même d’allonger la durée de vie de nombreuses espèces, l’augmentation des taux de ce facteur a un effet protecteur à l’égard de l’athérosclérose qui est bien documenté.66,67 Figure 4 (Continued). anormale des protéines de la membrane nucléaire, une agrégation des pores nucléaires, une désorganisation de l’hétérochromatine, des modifications épigénétiques et une dérégulation extrême de la transcription des gènes, une sensibilité accrue aux agents qui lèsent l’ADN et une diminution de la capacité de réparation de ce dernier. D’autres mécanismes pourraient résider dans l’altération de la fonction du réticulum endoplasmique (RE) et dans la diminution du pouvoir de réparation et de régénération des cellules souches. Reproduit (avec des modifications mineures) de Capell et al49 avec l’autorisation de l’éditeur. Copyright © 2007, Lippincott, Williams and Wilkins. 09:37:07:12:11 Page 37 Page 38 38 Circulation Janvier 2012 Les sirtuines sont d’importants éléments du réseau de signalisation anti-vieillissement ; or, il se trouve que la sirtuine 1 (SIRT1) est stimulée par la restriction calorique. Bien qu’elles aient initialement été classées parmi les histones désacétylases, les sirtuines exercent de multiples effets qui vont bien au-delà de la seule modification des histones. Selon les données recueillies à ce jour, les sirtuines présentes chez les mammifères consisteraient en deux protéines nucléaires, une protéine nucléolaire, une protéine cytoplasmique et trois protéines mitochondriales.68 Plusieurs de ces molécules paraissent jouer un rôle dans le stress cellulaire, la survie et la sénescence des cellules, le maintien de l’intégrité des télomères69 et le métabolisme cellulaire.68 Sirtuine 1 et pathologies cardiovasculaires Alors que certaines autres sirtuines sont peut-être biologiquement néfastes,68 de très nombreuses données montrent que la SIRT1 joue un rôle protecteur vis-à-vis des affections cardiovasculaires et neurodégénératives. Cette sirtuine, qui est l’orthologue humain du gène Sir2 de la levure, régule l’activité de plusieurs protéines cellulaires et systémiques impliquées dans le cycle de la vie, telles que p53,70 le facteur de transcription « forkhead » FOXO1,71 le facteur nucléaire κB,72 le co-activateur 1α des récepteurs gamma activés par les proliférateurs,73 l’isoforme endothéliale de la monoxyde d’azote synthétase74 et l’hormone de croissance.75 Bien que les données de longévité ne soient pas encore connues, il apparaît que les souris qui surexpriment SIRT1 présentent les mêmes caractéristiques que celles soumises à une restriction calorique : elles sont plus maigres, ont un métabolisme plus actif, une meilleure tolérance au glucose et des taux sanguins de cholestérol, d’adipokines, d’insuline et de glucose à jeun plus faibles.76 De même, l’administration de resvératrol, un polyphénol présent dans le vin rouge et qui est supposé activer la synthèse de SIRT1,77 allonge la durée de vie chez les espèces inférieures ainsi que chez la souris soumise à un régime hypercalorique, abolissant ainsi les effets exercés par ce régime sur 144 des 153 voies fortement affectées.78 Il est établi que la SIRT1 exerce de nombreux effets bénéfiques sur l’appareil vasculaire, notamment en stimulant la prolifération de l’endothélium et en protégeant celui-ci de la sénescence par l’inhibition des voies de la sérine-thréonine kinase.79 La SIRT1 régule également la capillarogenèse par l’intermédiaire de la désacétylation de FOXO1, la délétion du gène codant pour cette sirtuine ayant pour conséquences la formation de vaisseaux sanguins anormaux et l’altération de la néovascularisation induite en réponse à une ischémie.71 La SIRT1 diminue la production mitochondriale d’espèces réactives de l’oxygène au sein des cellules endothéliales des artères coronaires80 et réduit au moins partiellement le stress oxydatif endothélial induit par la fumée de cigarette.81 Cette sirtuine favorise, en outre, la relaxation vasculaire médiée par l’endothélium en désacétylant l’isoforme endothéliale de la monoxyde d’azote synthétase, ce qui augmente la concentration endothéliale en monoxyde d’azote,74 processus ayant vraisemblablement un effet protecteur à l’égard de l’athérosclérose.82 Pour finir, on sait aujourd’hui que deux facteurs contribuent à augmenter les taux de SIRT1 et l’expression de l’isoforme endothéliale de la monoxyde d’azote synthétase ; 09:37:07:12:11 Page 38 il s’agit de la restriction calorique74,83 et du flux artériel laminaire (athéroprotecteur).84 La SIRT1 exerce également des effets bénéfiques sur le cœur. Le resvératrol stimule la capillarogenèse myocardique par induction du facteur de croissance de l’endothélium vasculaire. Chez le rongeur, l’administration de resvératrol avant ligature de l’artère interventriculaire antérieure préserve la fonction ventriculaire gauche, diminue la taille du territoire myocardique infarci et augmente la densité en capillaires en périphérie de ce dernier.85 De plus, lorsqu’elle est de degré faible à modéré (mais pas trop forte), la surexpression cardiaque de la SIRT1 atténue l’hypertrophie cardiaque, les phénomènes d’apoptose et de fibrose, la dysfonction myocardique et la sénescence cellulaire liées à l’avancée en âge.86 Observation qui vient corroborer la relation existant entre l’activité physique et la santé cardiovasculaire, le taux intracardiaque de SIRT1 diminue chez la souris sénescente ; toutefois, l’exercice physique corrige partiellement cette évolution.87 Sirtuine 1 et troubles neurologiques L’activation de la SIRT1 a des effets neuroprotecteurs dans de nombreux modèles murins d’affections neurologiques primitives. Bien que les voies de signalisation qui sous-tendent ces effets neuroprotecteurs soient au moins partiellement indépendantes de l’activité de la désacétylase et demandent à être mieux caractérisées,88 il a, en effet, été établi que la SIRT1 exerce une action neuroprotectrice à l’égard des axonopathies et des neurodégénérescences,89 dans l’excitotoxicité,90 dans les modèles de maladie de Huntington et de sclérose latérale amyotrophique,91,92 ainsi que dans les dégénérescences de type Alzheimer, qu’il s’agisse du dépôt intracellulaire de peptides amyloïdes β ou des modèles murins in vivo de maladie d’Alzheimer.92–96 Il convient de noter ici que le rôle joué par la SIRT1 dans la maladie d’Alzheimer est corroboré par les modèles murins montrant que la restriction calorique freine la progression de la maladie97 ainsi que par les données épidémiologiques humaines faisant apparaître que le risque de maladie d’Alzheimer augmente parallèlement à l’importance des apports caloriques.98 Comparativement à celles pratiquées chez des sujets âgés indemnes de maladie d’Alzheimer, les analyses post mortem effectuées sur des individus alzheimériens ont révélé que leur cortex pariétal renfermait un plus faible taux de SIRT1, ce qui n’a pas été observé chez les sujets qui étaient atteints d’un trouble cognitif léger.99 La signalisation de la SIRT1 exerce également des effets neuroprotecteurs vis-à-vis de l’ischémie cérébrale et des troubles vasculaires cérébraux. Dans des modèles de privation neuronale en oxygène et en glucose suivie d’une reperfusion, l’activation de cette sirtuine a limité la formation d’espèces réactives de l’oxygène et de l’azote ainsi que l’inflammation.100,101 Fait quelque peu étonnant, la surexpression neuronale du gène de la SIRT1 s’est révélée dépourvue d’effet protecteur in vivo à l’égard de l’ischémie induite par l’occlusion de l’artère cérébrale moyenne.102 Cette observation demande toutefois à être considérée avec circonspection dans la mesure où les investigateurs ont utilisé des souris qui exprimaient des niveaux élevés de SIRT1 neuronale.102 En effet, comme cela a été précédemment souligné, alors que, lorsqu’elle est modérée, la surexpression myocardique de la Page 39 Kovacic et al Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement SIRT1 protège de l’altération cardiaque liée à l’âge, elle devient délétère si elle est trop importante.86 En revanche, le resvératrol diminue les lésions ischémiques cérébrales en agissant par l’intermédiaire d’une voie de signalisation dépendante de la SIRT1 qui fait intervenir la protéine découplante mitochondriale de type 2.103,104 Bien que le resvératrol soit également à même d’agir par des voies non médiées par la SIRT1,77 il convient de noter que ce principe actif a la propriété de limiter l’étendue de la zone infarcie, chez le rongeur, après une ischémie cérébrale,105 ce qui pourrait résulter d’une augmentation de la production de facteur de croissance de l’endothélium vasculaire et de la formation de néovaisseaux.106 Le resvératrol s’est également montré bénéfique dans des modèles murins d’hémorragie sous-arachnoïdienne.107 De récentes études suggèrent qu’il pourrait exister un important chevauchement entre les propriétés des sirtuines et celles de plusieurs des autres grands systèmes impliqués dans le vieillissement dont il est ici traité. C’est ainsi que, dans les cellules dépourvues de SIRT6, les télomères présentent des altérations du même type que celles observées dans le syndrome de Werner. Dans la chromatine télomérique, la SIRT6 intervient dans une étape de désacétylation qui est indispensable à l’association stable de WRN, le gène mutant qui est responsable du syndrome de Werner.69 Bien que la SIRT1 commande elle aussi le désacétylation et la stabilité de WRN,108,109 il a également été démontré qu’elle agit sur les séquences répétées des télomères, exerçant ainsi une régulation positive sur la longueur de ces derniers et limitant par là-même, leur raccourcissement au cours de l’avancée en âge.110 Il apparaît, par ailleurs, que la SIRT1 joue un rôle dans la détermination du devenir neural des progéniteurs cellulaires. Dans un environnement oxydatif, l’activation de cette sirtuine induit la différentiation de ces cellules en astrocytes, alors que, dans un contexte réducteur, ces dernières se différencient en neurones.111 Globalement, ces études apportent des éléments préliminaires encourageants quant à la possibilité d’agir de manière ciblée sur la signalisation de la SIRT1 pour freiner ou même abolir les altérations cardiovasculaires et neurologiques liées à l’âge. Il n’est donc pas surprenant que de nombreux brevets portant sur la SIRT1 aient d’ores et déjà été déposés112 et que plusieurs essais cliniques aient été lancés ou soient programmés pour évaluer la tolérance et l’efficacité du resvératrol ou d’autres activateurs de la SIRT1 nouvellement développés dans diverses affections, dont le cancer, la maladie d’Alzheimer, l’insulinorésistance et la dysfonction endothéliale. Les résultats définitifs ne seront connus que dans plusieurs années, mais les données préliminaires devraient être disponibles dans un avenir proche, car, dans certaines de ces études, la phase de recrutement est déjà achevée.58 Pour l’heure, en sa qualité de composé d’origine naturelle, le resvératrol n’est pas soumis aux conditions édictées par la Food and Drug Administration en matière de fourniture de données de qualité, de tolérance et d’efficacité ; il est donc en vente libre aux Etats-Unis sous forme de gélules à base d’extraits de vin rouge et de renouée de Sakhaline, qui est une plante originaire de Chine. Toutefois, à la suite de la publicité faite au resvératrol dans 60 minutes et dans l’Oprah Winfrey 09:37:07:12:11 Page 39 39 Show (NdT : un magazine d’actualités et un débat télévisé diffusés sur la chaîne CBS et qui bénéficient d’une large audience), Internet a été inondé de messages publicitaires et de déclarations de célébrités vantant les mérites de pilules anti-âge ou amincissantes à base de resvératrol, cela en l’absence de toute preuve scientifique ; les plaintes pour publicité mensongère et pratiques commerciales frauduleuses n’ont pas tardé à suivre.113 En outre, bien que les différentes études évoquées plus haut aient démontré l’efficacité du resvératrol à l’égard du vieillissement et des multiples pathologies liées à l’âge, des réserves ont été émises quant à la réalité de l’effet qui lui avait été originellement imputé, à savoir sa capacité à stimuler l’activité de la SIRT1.77 Il est à espérer que l’indispensable mise en œuvre d’essais randomisés et contrôlés contre placebo, conduits de manière rigoureuse, ne sera pas compromise par ce malheureux emballement du public et des scientifiques. Autres aspects du vieillissement Le vieillissement est un processus ubiquitaire qui influe sur un nombre quasi incalculable de programmes biologiques. Par nécessité, nous n’avons traité que quelques uns des aspects du vieillissement qui nous paraissaient mériter de l’être du fait de découvertes récentes et/ou parce qu’ils ont un important impact sur ce processus. Outre les notions qui ont été abordées, de multiples autres voies et systèmes présentent un intérêt incontestable. Le fait que ces éléments n’aient pu trouver place dans cet article ne signifie donc nullement que nous les avons jugés sans importance et nous ne saurions trop conseiller aux lecteurs intéressés d’explorer la vaste littérature qui leur est consacrée. Les aspects liés à l’âge dont il ne nous a pas été possible de traiter aussi longuement que nous l’aurions voulu comprennent l’altération de l’angiogenèse et la diminution de la capacité de formation de néovaisseaux,114 les modifications de la transcription et de la traduction des gènes,115–117 la diminution de l’activité fonctionnelle des reins, du foie, des poumons et des autres organes essentiels, l’abaissement des taux d’hormones sexuelles,118 les réductions de la masse musculaire (sarcopénie) et de la masse corporelle119 et l’altération du métabolisme du glucose.120 Conclusions Dans cette première partie d’un article de synthèse en deux parties sur le vieillissement et l’appareil vasculaire, nous avons choisi de privilégier les progrès importants enregistrés dans le domaine cellulaire qui nous paraissent d’un intérêt scientifique tout particulier ou susceptibles de trouver une traduction clinique. A l’examen de ces données, il apparaît que certains des phénomènes liés à l’âge identifiés à ce jour, dont l’attrition des télomères, l’accumulation de progérine et la sénescence cellulaire, témoignent peut-être du caractère relativement inexorable du processus de vieillissement cellulaire. De plus, dans la mesure où ces phénomènes et d’autres liés à l’âge se potentialisent, se chevauchent et interagissent les uns avec les autres, il est probable que leurs effets cellulaires délétères n’aillent qu’en s’aggravant au fil du temps. Les données disponibles semblent, dès lors, suggérer que l’âge des cellules est lui-même générateur de leur Page 40 40 Circulation Janvier 2012 vieillissement. De fait, ce modèle dans lequel l’âge engendre le vieillissement semble également s’étendre à la physiologie générale de l’individu sur un mode synergique ; en effet, le vieillissement d’un système accentue les contraintes qui s’exercent sur les autres systèmes, les cellules sénescentes soumettent l’organisme à des demandes accrues et l’organisme vieillissant impose davantage de travail aux cellules. Dans la seconde partie de cette revue de la littérature, nous changerons d’approche et nous nous intéresserons aux situations cliniques et aux affections spécifiquement liées à l’âge en examinant les nouvelles données fondamentales et cliniques qui ont fait progresser notre compréhension de ces pathologies. Nous détaillerons également la notion selon laquelle le vieillissement est un processus éminemment dynamique, résultat de l’interaction permanente entre cellules, organes, appareils et organisme. Déclarations Aucune. Références 1. Lim MA, Townsend RR. Arterial compliance in the elderly: its effect on blood pressure measurement and cardiovascular outcomes. Clin Geriatr Med. 2009;25:191–205. 2. US Census Bureau. 2008 National population projections. http:// www.census.gov/population/www/projections/tablesandcharts.html. Accessed September 20, 2010. 3. Williams MA, Fleg JL, Ades PA, Chaitman BR, Miller NH, Mohiuddin SM, Ockene IS, Taylor CB, Wenger NK. Secondary prevention of coronary heart disease in the elderly (with emphasis on patients > or = 75 years of age): an American Heart Association scientific statement from the Council on Clinical Cardiology Subcommittee on Exercise, Cardiac Rehabilitation, and Prevention. Circulation. 2002;105:1735–1743. 4. Afilalo J, Karunananthan S, Eisenberg MJ, Alexander KP, Bergman H. Role of frailty in patients with cardiovascular disease. Am J Cardiol. 2009;103:1616–1621. 5. Maroo BP, Lavie CJ, Milani RV. Efficacy and safety of intensive statin therapy in the elderly. Am J Geriatr Cardiol. 2008;17:92–100. 6. Mason CM. Preventing coronary heart disease and stroke with aggressive statin therapy in older adults using a team management model. J Am Acad Nurse Pract. 2009;21:47–53. 7. Ko DT, Mamdani M, Alter DA. Lipid-lowering therapy with statins in high-risk elderly patients: the treatment-risk paradox. JAMA. 2004;291: 1864–1870. 8. Grundy SM, Cleeman JI, Rifkind BM, Kuller LH. Cholesterol lowering in the elderly population: Coordinating Committee of the National Cholesterol Education Program. Arch Intern Med. 1999;159:1670–1678. 9. Calado RT, Young NS. Telomere diseases. N Engl J Med. 2009;361: 2353–2365. 10. Campisi J, d’Adda di Fagagna F. Cellular senescence: when bad things happen to good cells. Nat Rev Mol Cell Biol. 2007;8:729–740. 11. Olive M, Mellad JA, Beltran LE, Ma M, Cimato T, Noguchi AC, San H, Childs R, Kovacic JC, Boehm M. p21Cip1 modulates arterial wound repair through the stromal cell-derived factor-1/CXCR4 axis in mice. J Clin Invest. 2008;118:2050–2061. 12. Willeit P, Willeit J, Mayr A, Weger S, Oberhollenzer F, Brandstatter A, Kronenberg F, Kiechl S. Telomere length and risk of incident cancer and cancer mortality. JAMA. 2010;304:69–75. 13. Blasco MA, Lee HW, Hande MP, Samper E, Lansdorp PM, DePinho RA, Greider CW. Telomere shortening and tumor formation by mouse cells lacking telomerase RNA. Cell. 1997;91:25–34. 14. Leri A, Franco S, Zacheo A, Barlucchi L, Chimenti S, Limana F, NadalGinard B, Kajstura J, Anversa P, Blasco MA. Ablation of telomerase and telomere loss leads to cardiac dilatation and heart failure associated with p53 upregulation. EMBO J. 2003;22:131–139. 15. Blasco MA. Immunosenescence phenotypes in the telomerase knockout mouse. Springer Semin Immunopathol. 2002;24:75–85. 09:37:07:12:11 Page 40 16. Brouilette S, Singh RK, Thompson JR, Goodall AH, Samani NJ. White cell telomere length and risk of premature myocardial infarction. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2003;23:842–846. 17. O’Donnell CJ, Demissie S, Kimura M, Levy D, Gardner JP, White C, D’Agostino RB, Wolf PA, Polak J, Cupples LA, Aviv A. Leukocyte telomere length and carotid artery intimal medial thickness: the Framingham Heart Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2008;28:1165–1171. 18. Satoh M, Minami Y, Takahashi Y, Tabuchi T, Itoh T, Nakamura M. Effect of intensive lipid-lowering therapy on telomere erosion in endothelial progenitor cells obtained from patients with coronary artery disease. Clin Sci (Lond). 2009;116:827–835. 19. Brouilette SW, Moore JS, McMahon AD, Thompson JR, Ford I, Shepherd J, Packard CJ, Samani NJ. Telomere length, risk of coronary heart disease, and statin treatment in the West of Scotland Primary Prevention Study: a nested case-control study. Lancet. 2007;369:107–114. 20. Farzaneh-Far R, Cawthon RM, Na B, Browner WS, Schiller NB, Whooley MA. Prognostic value of leukocyte telomere length in patients with stable coronary artery disease: data from the Heart and Soul Study. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2008;28:1379–1384. 21. Fitzpatrick AL, Kronmal RA, Gardner JP, Psaty BM, Jenny NS, Tracy RP, Walston J, Kimura M, Aviv A. Leukocyte telomere length and cardiovascular disease in the cardiovascular health study. Am J Epidemiol. 2007;165:14–21. 22. Farzaneh-Far R, Lin J, Epel ES, Harris WS, Blackburn EH, Whooley MA. Association of marine omega-3 fatty acid levels with telomeric aging in patients with coronary heart disease. JAMA. 2010;303:250–257. 23. Wilson WR, Herbert KE, Mistry Y, Stevens SE, Patel HR, Hastings RA, Thompson MM, Williams B. Blood leucocyte telomere DNA content predicts vascular telomere DNA content in humans with and without vascular disease. Eur Heart J. 2008;29:2689–2694. 24. Chang E, Harley CB. Telomere length and replicative aging in human vascular tissues. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995;92:11190–11194. 25. Minamino T, Miyauchi H, Yoshida T, Ishida Y, Yoshida H, Komuro I. Endothelial cell senescence in human atherosclerosis: role of telomere in endothelial dysfunction. Circulation. 2002;105:1541–1544. 26. Farsetti A, Grasselli A, Bacchetti S, Gaetano C, Capogrossi MC. The telomerase tale in vascular aging: regulation by estrogens and nitric oxide signaling. J Appl Physiol. 2009;106:333–337. 27. Matthews C, Gorenne I, Scott S, Figg N, Kirkpatrick P, Ritchie A, Goddard M, Bennett M. Vascular smooth muscle cells undergo telomere-based senescence in human atherosclerosis: effects of telomerase and oxidative stress. Circ Res. 2006;99:156–164. 28. Shelton DN, Chang E, Whittier PS, Choi D, Funk WD. Microarray analysis of replicative senescence. Curr Biol. 1999;9:939–945. 29. Maier JA, Statuto M, Ragnotti G. Senescence stimulates U937endothelial cell interactions. Exp Cell Res. 1993;208:270–274. 30. Kurz DJ, Decary S, Hong Y, Trivier E, Akhmedov A, Erusalimsky JD. Chronic oxidative stress compromises telomere integrity and accelerates the onset of senescence in human endothelial cells. J Cell Sci. 2004;117: 2417–2426. 31. Chen J, Huang X, Halicka D, Brodsky S, Avram A, Eskander J, Bloomgarden NA, Darzynkiewicz Z, Goligorsky MS. Contribution of p16INK4a and p21CIP1 pathways to induction of premature senescence of human endothelial cells: permissive role of p53. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006;290:H1575–H1586. 32. Kovacic JC, Gupta R, Lee AC, Ma M, Fang F, Tolbert CN, Walts AD, Beltran LE, San H, Chen G, St Hilaire C, Boehm M. Stat3-dependent acute Rantes production in vascular smooth muscle cells modulates inflammation following arterial injury in mice. J Clin Invest. 2010;120: 303–314. 33. Werner C, Furster T, Widmann T, Poss J, Roggia C, Hanhoun M, Scharhag J, Buchner N, Meyer T, Kindermann W, Haendeler J, Bohm M, Laufs U. Physical exercise prevents cellular senescence in circulating leukocytes and in the vessel wall. Circulation. 2009;120:2438–2447. 34. Khan SJ, Pham S, Wei Y, Mateo D, St-Pierre M, Fletcher TM, VazquezPadron RI. Stress-induced senescence exaggerates postinjury neointimal formation in the old vasculature. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2010;298:H66–H74. 35. Kovacic JC, Boehm M. Resident vascular progenitor cells: an emerging role for non-terminally differentiated vessel-resident cells in vascular biology. Stem Cell Res. 2009;2:2–15. 36. Kovacic JC, Moore J, Herbert A, Ma D, Boehm M, Graham RM. Endothelial progenitor cells, angioblasts, and angiogenesis: old terms Page 41 Kovacic et al 37. 38. 39. 40. 41. 42. 43. 44. 45. 46. 47. 48. 49. 50. 51. 52. 53. 54. 09:37:07:12:11 Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement reconsidered from a current perspective. Trends Cardiovasc Med. 2008;18:45–51. Kovacic JC, Muller DW, Harvey R, Graham RM. Update on the use of stem cells for cardiac disease. Intern Med J. 2005;35:348–356. Moreno PR, Sanz J, Fuster V. Promoting mechanisms of vascular health: circulating progenitor cells, angiogenesis, and reverse cholesterol transport. J Am Coll Cardiol. 2009;53:2315–2323. Bosch-Marce M, Okuyama H, Wesley JB, Sarkar K, Kimura H, Liu YV, Zhang H, Strazza M, Rey S, Savino L, Zhou YF, McDonald KR, Na Y, Vandiver S, Rabi A, Shaked Y, Kerbel R, Lavallee T, Semenza GL. Effects of aging and hypoxia-inducible factor-1 activity on angiogenic cell mobilization and recovery of perfusion after limb ischemia. Circ Res. 2007;101:1310–1318. Chang EI, Loh SA, Ceradini DJ, Chang EI, Lin SE, Bastidas N, Aarabi S, Chan DA, Freedman ML, Giaccia AJ, Gurtner GC. Age decreases endothelial progenitor cell recruitment through decreases in hypoxiainducible factor 1alpha stabilization during ischemia. Circulation. 2007;116:2818–2829. Laufs U, Werner N, Link A, Endres M, Wassmann S, Jurgens K, Miche E, Bohm M, Nickenig G. Physical training increases endothelial progenitor cells, inhibits neointima formation, and enhances angiogenesis. Circulation. 2004;109:220–226. Steiner S, Niessner A, Ziegler S, Richter B, Seidinger D, Pleiner J, Penka M, Wolzt M, Huber K, Wojta J, Minar E, Kopp CW. Endurance training increases the number of endothelial progenitor cells in patients with cardiovascular risk and coronary artery disease. Atherosclerosis. 2005;181:305–310. Sandri M, Adams V, Gielen S, Linke A, Lenk K, Krankel N, Lenz D, Erbs S, Scheinert D, Mohr FW, Schuler G, Hambrecht R. Effects of exercise and ischemia on mobilization and functional activation of blood-derived progenitor cells in patients with ischemic syndromes: results of 3 randomized studies. Circulation. 2005;111:3391–3399. Hoetzer GL, Van Guilder GP, Irmiger HM, Keith RS, Stauffer BL, DeSouza CA. Aging, exercise, and endothelial progenitor cell clonogenic and migratory capacity in men. J Appl Physiol. 2007;102: 847–852. Hennekam RC. Hutchinson-Gilford progeria syndrome: review of the phenotype. Am J Med Genet A. 2006;140:2603–2624. Olive M, Harten I, Mitchell R, Beers JK, Djabali K, Cao K, Erdos MR, Blair C, Funke B, Smoot L, Gerhard-Herman M, Machan JT, Kutys R, Virmani R, Collins FS, Wight TN, Nabel EG, Gordon LB. Cardiovascular pathology in Hutchinson-Gilford progeria: correlation with the vascular pathology of aging. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2010;30: 2301–2309. Stehbens WE, Wakefield SJ, Gilbert-Barness E, Olson RE, Ackerman J. Histological and ultrastructural features of atherosclerosis in progeria. Cardiovasc Pathol. 1999;8:29–39. Eriksson M, Brown WT, Gordon LB, Glynn MW, Singer J, Scott L, Erdos MR, Robbins CM, Moses TY, Berglund P, Dutra A, Pak E, Durkin S, Csoka AB, Boehnke M, Glover TW, Collins FS. Recurrent de novo point mutations in lamin A cause Hutchinson-Gilford progeria syndrome. Nature. 2003;423:293–298. Capell BC, Collins FS, Nabel EG. Mechanisms of cardiovascular disease in accelerated aging syndromes. Circ Res. 2007;101:13–26. Liu B, Wang J, Chan KM, Tjia WM, Deng W, Guan X, Huang JD, Li KM, Chau PY, Chen DJ, Pei D, Pendas AM, Cadinanos J, Lopez-Otin C, Tse HF, Hutchison C, Chen J, Cao Y, Cheah KS, Tryggvason K, Zhou Z. Genomic instability in laminopathy-based premature aging. Nat Med. 2005;11:780–785. Varela I, Cadinanos J, Pendas AM, Gutierrez-Fernandez A, Folgueras AR, Sanchez LM, Zhou Z, Rodriguez FJ, Stewart CL, Vega JA, Tryggvason K, Freije JM, Lopez-Otin C. Accelerated ageing in mice deficient in Zmpste24 protease is linked to p53 signalling activation. Nature. 2005;437:564–568. Bergo MO, Gavino B, Ross J, Schmidt WK, Hong C, Kendall LV, Mohr A, Meta M, Genant H, Jiang Y, Wisner ER, Van Bruggen N, Carano RA, Michaelis S, Griffey SM, Young SG. Zmpste24 deficiency in mice causes spontaneous bone fractures, muscle weakness, and a prelamin A processing defect. Proc Natl Acad Sci U S A. 2002;99:13049–13054. Halaschek-Wiener J, Brooks-Wilson A. Progeria of stem cells: stem cell exhaustion in Hutchinson-Gilford progeria syndrome. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 2007;62:3–8. Piantanelli L. Cancer and aging: from the kinetics of biological Page 41 55. 56. 57. 58. 59. 60. 61. 62. 63. 64. 65. 66. 67. 68. 69. 70. 71. 72. 73. 74. 41 parameters to the kinetics of cancer incidence and mortality. Ann N Y Acad Sci. 1988;521:99–109. Scaffidi P, Misteli T. Lamin A-dependent misregulation of adult stem cells associated with accelerated ageing. Nat Cell Biol. 2008;10:452–459. Scaffidi P, Misteli T. Lamin A-dependent nuclear defects in human aging. Science. 2006;312:1059–1063. Ragnauth CD, Warren DT, Liu Y, McNair R, Tajsic T, Figg N, Shroff R, Skepper J, Shanahan CM. Prelamin A acts to accelerate smooth muscle cell senescence and is a novel biomarker of human vascular aging. Circulation. 2010;121:2200–2210. US National Institutes of Health. ClinicalTrials.gov. www.clinicaltrials.gov. Accessed September 20, 2010. Capell BC, Erdos MR, Madigan JP, Fiordalisi JJ, Varga R, Conneely KN, Gordon LB, Der CJ, Cox AD, Collins FS. Inhibiting farnesylation of progerin prevents the characteristic nuclear blebbing of HutchinsonGilford progeria syndrome. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005;102: 12879–12884. Capell BC, Olive M, Erdos MR, Cao K, Faddah DA, Tavarez UL, Conneely KN, Qu X, San H, Ganesh SK, Chen X, Avallone H, Kolodgie FD, Virmani R, Nabel EG, Collins FS. A farnesyltransferase inhibitor prevents both the onset and late progression of cardiovascular disease in a progeria mouse model. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105: 15902–15907. Varga R, Eriksson M, Erdos MR, Olive M, Harten I, Kolodgie F, Capell BC, Cheng J, Faddah D, Perkins S, Avallone H, San H, Qu X, Ganesh S, Gordon LB, Virmani R, Wight TN, Nabel EG, Collins FS. Progressive vascular smooth muscle cell defects in a mouse model of HutchinsonGilford progeria syndrome. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006;103: 3250–3255. McCay CM, Crowell MF, Maynard LA. The effect of retarded growth upon the length of life span and upon the ultimate body size. J Nutr. 1935;10:63–79. Mehta LH, Roth GS. Caloric restriction and longevity: the science and the ascetic experience. Ann N Y Acad Sci. 2009;1172:28–33. Selman C, Tullet JM, Wieser D, Irvine E, Lingard SJ, Choudhury AI, Claret M, Al-Qassab H, Carmignac D, Ramadani F, Woods A, Robinson IC, Schuster E, Batterham RL, Kozma SC, Thomas G, Carling D, Okkenhaug K, Thornton JM, Partridge L, Gems D, Withers DJ. Ribosomal protein S6 kinase 1 signaling regulates mammalian life span. Science. 2009;326:140–144. Kenyon CJ. The genetics of ageing. Nature. 2010;464:504–512. Higashi Y, Sukhanov S, Anwar A, Shai SY, Delafontaine P. IGF-1, oxidative stress and atheroprotection. Trends Endocrinol Metab. 2010;21: 245–254. Sukhanov S, Higashi Y, Shai SY, Vaughn C, Mohler J, Li Y, Song YH, Titterington J, Delafontaine P. IGF-1 reduces inflammatory responses, suppresses oxidative stress, and decreases atherosclerosis progression in ApoE-deficient mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2007;27:2684–2690. Taylor DM, Maxwell MM, Luthi-Carter R, Kazantsev AG. Biological and potential therapeutic roles of sirtuin deacetylases. Cell Mol Life Sci. 2008;65:4000–4018. Michishita E, McCord RA, Berber E, Kioi M, Padilla-Nash H, Damian M, Cheung P, Kusumoto R, Kawahara TL, Barrett JC, Chang HY, Bohr VA, Ried T, Gozani O, Chua KF. SIRT6 is a histone H3 lysine 9 deacetylase that modulates telomeric chromatin. Nature. 2008;452: 492–496. Vaziri H, Dessain SK, Ng Eaton E, Imai SI, Frye RA, Pandita TK, Guarente L, Weinberg RA. hSIR2(SIRT1) functions as an NADdependent p53 deacetylase. Cell. 2001;107:149–159. Potente M, Ghaeni L, Baldessari D, Mostoslavsky R, Rossig L, Dequiedt F, Haendeler J, Mione M, Dejana E, Alt FW, Zeiher AM, Dimmeler S. SIRT1 controls endothelial angiogenic functions during vascular growth. Genes Dev. 2007;21:2644–2658. Yeung F, Hoberg JE, Ramsey CS, Keller MD, Jones DR, Frye RA, Mayo MW. Modulation of NF-kappaB-dependent transcription and cell survival by the SIRT1 deacetylase. EMBO J. 2004;23:2369–2380. Nemoto S, Fergusson MM, Finkel T. SIRT1 functionally interacts with the metabolic regulator and transcriptional coactivator PGC-1α. J Biol Chem. 2005;280:16456–16460. Mattagajasingh I, Kim CS, Naqvi A, Yamamori T, Hoffman TA, Jung SB, DeRicco J, Kasuno K, Irani K. SIRT1 promotes endotheliumdependent vascular relaxation by activating endothelial nitric oxide synthase. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104:14855–14860. Page 42 42 Circulation Janvier 2012 75. Cohen DE, Supinski AM, Bonkowski MS, Donmez G, Guarente LP. Neuronal SIRT1 regulates endocrine and behavioral responses to calorie restriction. Genes Dev. 009;23:2812–2817. 76. Bordone L, Cohen D, Robinson A, Motta MC, van Veen E, Czopik A, Steele AD, Crowe H, Marmor S, Luo J, Gu W, Guarente L. SIRT1 transgenic mice show phenotypes resembling calorie restriction. Aging Cell. 2007;6:759–767. 77. Ledford H. Much ado about ageing. Nature. 2010;464:480–481. 78. Baur JA, Pearson KJ, Price NL, Jamieson HA, Lerin C, Kalra A, Prabhu VV, Allard JS, Lopez-Lluch G, Lewis K, Pistell PJ, Poosala S, Becker KG, Boss O, Gwinn D, Wang M, Ramaswamy S, Fishbein KW, Spencer RG, Lakatta EG, Le Couteur D, Shaw RJ, Navas P, Puigserver P, Ingram DK, de Cabo R, Sinclair DA. Resveratrol improves health and survival of mice on a high-calorie diet. Nature. 2006;444:337–442. 79. Zu Y, Liu L, Lee MY, Xu C, Liang Y, Man RY, Vanhoutte PM, Wang Y. SIRT1 promotes proliferation and prevents senescence through targeting LKB1 in primary porcine aortic endothelial cells. Circ Res. 2010;106:1384–1393. 80. Ungvari Z, Labinskyy N, Mukhopadhyay P, Pinto JT, Bagi Z, Ballabh P, Zhang C, Pacher P, Csiszar A. Resveratrol attenuates mitochondrial oxidative stress in coronary arterial endothelial cells. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2009;297:H1876–H1881. 81. Csiszar A, Labinskyy N, Podlutsky A, Kaminski PM, Wolin MS, Zhang C, Mukhopadhyay P, Pacher P, Hu F, de Cabo R, Ballabh P, Ungvari Z. Vasoprotective effects of resveratrol and SIRT1: attenuation of cigarette smoke-induced oxidative stress and proinflammatory phenotypic alterations. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2008;294: H2721–H2735. 82. Zhang QJ, Wang Z, Chen HZ, Zhou S, Zheng W, Liu G, Wei YS, Cai H, Liu DP, Liang CC. Endothelium-specific overexpression of class III deacetylase SIRT1 decreases atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice. Cardiovasc Res. 2008;80:191–199. 83. Nisoli E, Tonello C, Cardile A, Cozzi V, Bracale R, Tedesco L, Falcone S, Valerio A, Cantoni O, Clementi E, Moncada S, Carruba MO. Calorie restriction promotes mitochondrial biogenesis by inducing the expression of eNOS. Science. 2005;310:314–317. 84. Chen Z, Peng IC, Cui X, Li YS, Chien S, Shyy JY. Shear stress, SIRT1, and vascular homeostasis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107: 10268–10273. 85. Kaga S, Zhan L, Matsumoto M, Maulik N. Resveratrol enhances neovascularization in the infarcted rat myocardium through the induction of thioredoxin-1, heme oxygenase-1 and vascular endothelial growth factor. J Mol Cell Cardiol. 2005;39:813–822. 86. Alcendor RR, Gao S, Zhai P, Zablocki D, Holle E, Yu X, Tian B, Wagner T, Vatner SF, Sadoshima J. Sirt1 regulates aging and resistance to oxidative stress in the heart. Circ Res. 2007;100:1512–1521. 87. Ferrara N, Rinaldi B, Corbi G, Conti V, Stiuso P, Boccuti S, Rengo G, Rossi F, Filippelli A. Exercise training promotes SIRT1 activity in aged rats. Rejuvenation Res. 2008;11:139–150. 88. Pfister JA, Ma C, Morrison BE, D’Mello SR. Opposing effects of sirtuins on neuronal survival: SIRT1-mediated neuroprotection is independent of its deacetylase activity. PLoS One. 2008;3:e4090. 89. Araki T, Sasaki Y, Milbrandt J. Increased nuclear NAD biosynthesis and SIRT1 activation prevent axonal degeneration. Science. 2004;305: 1010–1013. 90. Virgili M, Contestabile A. Partial neuroprotection of in vivo excitotoxic brain damage by chronic administration of the red wine antioxidant agent, trans-resveratrol in rats. Neurosci Lett. 2000;281:123–126. 91. Parker AJ, Arango M, Abderrahmane S, Lambert E, Tourette C, Catoire H, Neri C. Resveratrol rescues mutant polyglutamine cytotoxicity in nematode and mammalian neurons [in French]. Med Sci (Paris). 2005;21:556–557. 92. Kim D, Nguyen MD, Dobbin MM, Fischer A, Sananbenesi F, Rodgers JT, Delalle I, Baur JA, Sui G, Armour SM, Puigserver P, Sinclair DA, Tsai LH. SIRT1 deacetylase protects against neurodegeneration in models for Alzheimer’s disease and amyotrophic lateral sclerosis. EMBO J. 2007;26:3169–3179. 93. Donmez G, Wang D, Cohen DE, Guarente L. SIRT1 suppresses betaamyloid production by activating the alpha-secretase gene ADAM10. Cell. 2010;142:320–332. 94. Sharma M, Gupta YK. Chronic treatment with trans resveratrol prevents intracerebroventricular streptozotocin induced cognitive impairment and oxidative stress in rats. Life Sci. 2002;71:2489–2498. 09:37:07:12:11 Page 42 95. Marambaud P, Zhao H, Davies P. Resveratrol promotes clearance of Alzheimer’s disease amyloid-beta peptides. J Biol Chem. 2005;280: 37377–37382. 96. Wang J, Fivecoat H, Ho L, Pan Y, Ling E, Pasinetti GM. The role of Sirt1: at the crossroad between promotion of longevity and protection against Alzheimer’s disease neuropathology. Biochim Biophys Acta. 2009;1804:1690–1694. 97. Patel NV, Gordon MN, Connor KE, Good RA, Engelman RW, Mason J, Morgan DG, Morgan TE, Finch CE. Caloric restriction attenuates Abeta-deposition in Alzheimer transgenic models. Neurobiol Aging. 2005;26:995–1000. 98. Luchsinger JA, Tang MX, Shea S, Mayeux R. Caloric intake and the risk of Alzheimer disease. Arch Neurol. 2002;59:1258–1263. 99. Julien C, Tremblay C, Emond V, Lebbadi M, Salem N Jr, Bennett DA, Calon F. Sirtuin 1 reduction parallels the accumulation of tau in Alzheimer disease. J Neuropathol Exp Neurol. 2009;68:48–58. 100. Wang T, Gu J, Wu PF, Wang F, Xiong Z, Yang YJ, Wu WN, Dong LD, Chen JG. Protection by tetrahydroxystilbene glucoside against cerebral ischemia: involvement of JNK, SIRT1, and NF-kappaB pathways and inhibition of intracellular ROS/RNS generation. Free Radic Biol Med. 2009;47:229–240. 101. Wang L, Zhang L, Chen ZB, Wu JY, Zhang X, Xu Y. Icariin enhances neuronal survival after oxygen and glucose deprivation by increasing SIRT1. Eur J Pharmacol. 2009;609:40–44. 102. Kakefuda K, Fujita Y, Oyagi A, Hyakkoku K, Kojima T, Umemura K, Tsuruma K, Shimazawa M, Ito M, Nozawa Y, Hara H. Sirtuin 1 overexpression mice show a reference memory deficit, but not neuroprotection. Biochem Biophys Res Commun. 2009;387:784–788. 103. Della-Morte D, Dave KR, DeFazio RA, Bao YC, Raval AP, PerezPinzon MA. Resveratrol pretreatment protects rat brain from cerebral ischemic damage via a sirtuin 1-uncoupling protein 2 pathway. Neuroscience. 2009;159:993–1002. 104. Raval AP, Dave KR, Perez-Pinzon MA. Resveratrol mimics ischemic preconditioning in the brain. J Cereb Blood Flow Metab. 2006;26: 1141–1147. 105. Huang SS, Tsai MC, Chih CL, Hung LM, Tsai SK. Resveratrol reduction of infarct size in Long-Evans rats subjected to focal cerebral ischemia. Life Sci. 2001;69:1057–1065. 106. Dong W, Li N, Gao D, Zhen H, Zhang X, Li F. Resveratrol attenuates ischemic brain damage in the delayed phase after stroke and induces messenger RNA and protein express for angiogenic factors. J Vasc Surg. 2008;48:709–714. 107. Karaoglan A, Akdemir O, Barut S, Kokturk S, Uzun H, Tasyurekli M, Colak A. The effects of resveratrol on vasospasm after experimental subarachnoidal hemorrhage in rats. Surg Neurol. 2008;70:337–343. 108. Kahyo T, Mostoslavsky R, Goto M, Setou M. Sirtuin-mediated deacetylation pathway stabilizes Werner syndrome protein. FEBS Lett. 2008;582:2479–2483. 109. Li K, Casta A, Wang R, Lozada E, Fan W, Kane S, Ge Q, Gu W, Orren D, Luo J. Regulation of WRN protein cellular localization and enzymatic activities by SIRT1-mediated deacetylation. J Biol Chem. 2008;283:7590–7598. 110. Palacios JA, Herranz D, De Bonis ML, Velasco S, Serrano M, Blasco MA. SIRT1 contributes to telomere maintenance and augments global homologous recombination. J Cell Biol. 2010;191:1299–1313. 111. Prozorovski T, Schulze-Topphoff U, Glumm R, Baumgart J, Schroter F, Ninnemann O, Siegert E, Bendix I, Brustle O, Nitsch R, Zipp F, Aktas O. Sirt1 contributes critically to the redox-dependent fate of neural progenitors. Nat Cell Biol. 2008;10:385–394. 112. Pillarisetti S. A review of Sirt1 and Sirt1 modulators in cardiovascular and metabolic diseases. Recent Pat Cardiovasc Drug Discov. 2008;3: 156–164. 113. Arnquist S. With resveratrol, buyer beware. New York Times. August 18, 2009. http://www.nytimes.com/2009/08/18/science/18ageside. html?_r=1&scp=12&sq=arnquist&st=cse. Accessed March 16, 2011. 114. Rivard A, Fabre JE, Silver M, Chen D, Murohara T, Kearney M, Magner M, Asahara T, Isner JM. Age-dependent impairment of angiogenesis. Circulation. 1999;99:111–120. 115. Nakamura T, Fox-Robichaud A, Kikkawa R, Kashiwagi A, Kojima H, Fujimiya M, Wong NC. Transcription factors and age-related decline in apolipoprotein A-I expression. J Lipid Res. 1999;40:1709–1718. 116. Prall WC, Czibere A, Jager M, Spentzos D, Libermann TA, Gattermann N, Haas R, Aivado M. Age-related transcription levels of Page 43 Kovacic et al Sénescence cellulaire, pathologie vasculaire et vieillissement KU70, MGST1 and BIK in CD34+ hematopoietic stem and progenitor cells. Mech Ageing Dev. 2007;128:503–510. 117. de Magalhaes JP, Curado J, Church GM. Meta-analysis of age-related gene expression profiles identifies common signatures of aging. Bioinformatics. 2009;25:875–881. 118. Smiley DA, Khalil RA. Estrogenic compounds, estrogen receptors and vascular cell signaling in the aging blood vessels. Curr Med Chem. 2009;16:1863–1887. 119. Vinciguerra M, Musaro A, Rosenthal N. Regulation of muscle atrophy in aging and disease. Adv Exp Med Biol. 2010;694:211–233. 09:37:07:12:11 Page 43 43 120. Iozzo P, Beck-Nielsen H, Laakso M, Smith U, Yki-Jarvinen H, Ferrannini E. Independent influence of age on basal insulin secretion in nondiabetic humans: European Group for the Study of Insulin Resistance. J Clin Endocrinol Metab. 1999;84:863–868. M : vieillissement 䊏 maladies cardiovasculaires 䊏 facteurs de risque 䊏 cellules souches 䊏 facteur associé à la calcification vasculaire, espèce humaine
© Copyright 2026 Paperzz