RESEARCH REPORT
Title: The alien invasive legume Inga punctata in mountain range Sierra del Rosario:
current distribution, impact, invasion pathways and management recommendations1.
Author: Lisbet Gonzalez-Oliva
Recent Cuban inventory of invasive flora points out that our native and highly diverse
riparian forests are heavily affected by plant invasions. It can found one of the best
examples on the mountains of western Cuba where Biosphere Reserve Sierra del
Rosario (BRSR) riparian forest has been invaded by an aggressive alien legume named
Inga punctata, without records as invasive in other part of the world and no data about
successful control. Information about current extent, impact and invasion pathways of
Inga punctata at Sierra de Rosario, and control effectiveness by tree cutting and double
girdling can be help in design an Inga punctata control/prevention strategy. As well as
invaded forest restoration planning and conservation of non-invaded forests.
During this project, we aimed all these matters. We did the prospection of BRSR as well
as western sector of the Sierra del Rosario mountain range, further than BRSR
boundaries, in order to document current distributional range of alien Inga punctata. We
assessed impact of this invasive legume on riparian forest, comparing invaded and noninvaded forest and regeneration species composition under canopy.
Results show Inga punctata has a more extensive distributional range than was initially
suspected, going beyond BRSR. After perform several interviews to local old men, its
introduction was dated from 1940s, seems due to its edible seed. First tree was planted
in a former private property at the village El Roble. It is presumed that some other trees
were planted later in another property of the same family in Mango Bonito, at the
western boundary of BRSR.
After 70 years there are more than 200 km2 at the middle of Sierra del Rosario
mountain range completely invaded by Inga puntata (Figure 1). However, current extent
of invasion only compromise west and south sectors of Biosphere Reserve Sierra del
Rosario (BRSR). Most infested areas were found at riparian forest of tributaries and
rivers San Cristóbal, Santiago and Manantiales, but also at river Bayate inside BRSR.
Forest at both sides of some main ways is also extremely affected. Inside the noninvaded matrix were also located four small and middle size patches invaded by Inga,
threaten two other main rivers San Juan and San Miguel and also one of the three
conservation core areas of RBSR (El Salón).
1
This research was funded by Rufford Small Grants, through the project Invasive alien legume Inga punctata in
Biosphere Reserve Sierra del Rosario (Cuba): assessment and initial actions for control and native forest
restoration. RSG reference 14746-1
Figure 1. Invasion map of alien tree Inga punctata in Sierra del Rosario mountain range.
Figure 2. Endemic and threatened species affected by invasion of Inga punctata. (a-b)
endemic species exclusive from Sierra del Rosario, (a,c,e) threatened endemic species.
a, Zanthoxylum ekmanii; b, Gonzalagunia sagraeana; c, Piresiella strephioides; d,
Heberstigma cubenese; e, Ardisia dentata.
The non-invaded native riparian forest shows Matayba apetala (locally named macurije)
as dominant tree. Some endemic and/or threatened plants, like the local endemic
Gonzalagunia sagraeana and the endangered Ardisia dentata appears as abundant
(Figure 2). We recorded a total of 135 native species on assessed riparian forest
(Annex 1). More than half are Caribbean endemics and 11 are endemic of Cuba,
including 2 Sierra del Rosario endemics: Zanthoxylum ekmanii and Gonzalagunia
sagraeana. Three of these Cuban endemics are also threatened: Ardisia dentata (EN),
Piresiella strephioides (EN) and Z. ekmanii (CR). In this native riparian forest were
recorded abundances between 15 and 30% of overall plants for dominant tree Matayba
apetala, and other native species are common in the sample, including the local
endemic Gonzalagunia sagraeana and the endangered Ardisia dentata.
Although we expect found a negative impact on riparian forest invaded by Inga
punctata, we never suspect its magnitude. The alien legume was recorded replacing
Matayba apetala as dominant species in invaded forest (Figure 3), exceeding frequently
35% of overall plants. Also the number of species sharing the habitat was diminished,
formerly common endemic and endangered species became rare, and others
disappear.
Same or more extreme pattern were found on plant regeneration under canopy of
invaded forest (Figure 4). Matayba apetala, dominant tree in non-invaded riparian forest
is native most abundant after Inga punctata and some other trees formerly abundant
like Trichospermum mexicanum (a pioneer species), Calophyllum antillanum, Talipariti
elatum and Trophis racemosa, also persist at low abundances. These species could be
used for restoration purposes after Inga punctata control management on invaded forest
(Annex 2).
Figura 3. Typical species rank-abundance curve obtained for riparian forest invaded by
Inga punctata.
Figure 4. Typical species rank-abundance curve obtained for regeneration under
invaded riparian forest canopy.
In addition, were documented primary dispersal vectors, invasion pathways and Inga
punctata life traits that favor the rapid spread and its high densities in riparian forest
(Figure 5). This species takes advantage from natural or human-made forest gaps.
Adults produce many fruits with 6-12 seed each one. Seed germination takes place
even inside the fruits and before dispersal (Figure 5b). That increase speed of seedling
establishment, which occur over the ground or even inside the water at high
survivorship percentage (Figures 5d and 6). As consequence, the area around parental
plants become in dense nurseries of Inga punctata after fruits dropping (Figure 5e), then
established individuals grow as monospecific stand and become reproductive adults in
less than 1 year, faster than any of native pioneer of that forest like Trichospermum
mexicanum and Cecropia peltata. All these improve invasion capacity of Inga punctata
and vulnerability of Sierra del Rosario's riparian forest to its invasion.
Not less important is people behaviour as invasion pathway. Local people, especially
children, like to eat Inga punctata seed wrapping. After eaten these viable seeds are
dropped anywhere. That can explain all monospecific Inga punctata belt forests
recorded to main ways sides. For same reason people keep introducing and planting
Inga punctata on new and non-invaded places of Sierra del Rosario. The most recent
introduction (less than 10 years) were reported to us by local people of Los Cayos
village at the margins of still non-invaded San Miguel river.
Figure 5. Documented life traits of Inga punctata that promote the rapid spread and
transformation of riparian forests in Sierra del Rosario.
Figure 6. Seedlings established even into the stream at Sierra del Rosario.
As results of control experiment were found both, tree cutting (Figure 7a) and double
girdling (Figure 7b), could be drive to the dead of treated tree if are followed by resprouts removing 3, 6 and 9 month after first treatment (also a new tissue produced by
plants in the girdles area, Figure 7c). However, they showed significant differences in
term of management effort and effect on surrounding forest.
Figure 7. Mechanical treatments used in control experiment of Inga punctata. a, trunk
and removed re-sprouts after tree cutting; b, trees treated by double girdling; c, new
tissue produced by plants in the girdles area that also must be removed.
Tree cutting promote reinvasion of the made gaps, at least without parallel effective
reforestation actions. Twelve months after experiment beginning, in the former gap the
number of reproductive adults of this alien legume was increased 7 times and more
than 80% of forest regeneration belongs to this Inga punctata. Tree cutting also needed
more effort during maintenance phase due to many more produced re-sprouts.
In contrast, with double girdling was registered an abundance decrease of Inga
punctata adults (Figure 8), together with a significant increase in number of native
species in the regeneration (Figure 9), including endemics and threatened as Ardisia
dentanta and Gonzalagunia sagraeana.
Figure 8 (left). Progressive reduction of Inga punctata adults on forest after treat 12
individual by double girdling.
Figure 9 (right). Richness on forest regeneration, increasing after double girdling
management and decreasing after tree cutting.
MANAGEMENT RECOMMENDATIONS BASED IN RESEARCH RESULTS

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






Intensification of a control/prevention strategy using all state management resources and
all local farmers that can be involve.
Eradication of invaded small patch on the boundary of BRSR's conservation core reserve
El Salon, and two others small patches at the upper stream of Bayate river and close to
river San Miguel.
Amplify and intensify the awareness campaign for responsible management of the seeds
remaining after eaten and prevention of intentional introduction or propagation.
Implement a girdling campaign and plan from inside to outside of BRSR, beginning at
middle size patch close to Las Terrazas town and at the upper sector of Bayate river.
Avoid to do gaps and opened areas in the forest promoting invasion by Inga punctata.
We strongly recommend double girdling and not tree cutting as control/eradication
method for alien invasive Inga punctata.
For be effective both girdling and tree cutting must be followed by removing re-sprouts 3,
6 and 9 months. Also new tissue should be removed if double girdling.
If tree cutting is used as management action, simultaneously gaps reforesting are needed
for avoid re-infestation. For this reforesting purpose we recommend the use of natives
trees Matayba apetala, Trophis racemosa, Trichospermum mexicanum, Calophyllum spp
and Talipariti elatum. That will be first step to restoration riparian forest.
Monitoring the diminish population of critical endangered and local endemic Zanthoxylum
ekmanii, as well as endangered Ardisia dentata and Piresiella strephioides, and local
endemic Gonzalagunia sagraeana. Also perform propagation assays of these species in
order to reinforce its populations.
Take into account the other alien species considered as invasive in Cuba found during
this research, emphasizing in frequent and transformers as Trimezia steyermarkii,
Syzygium jambos, Cyperus alternifolius and Oeceoclades maculata (Annex 3).
Annex 1. Current composition of native riparian forest of BRSR
Botanical family
Scientific name
Acanthaceae
Rhuellia sp
Annonaceae
Oxandra lanceolata (Sw.) Baill.
Apocynaceae
Forsteronia corymbosa (Jacq.) G. Mey.
Araceae
Anthurium cubense Engl.
Araceae
Araliaceae
Philodendron clementis C. Wright ex Griseb.
=Philodendron fragrantissimum (Hook.) G. Don
Dendropanax arboreus (L.) Decne. & Planch.
Arecaceae
Roystonea regia (Kunth) O.F. Cook
Asteraceae
Bidens pilosa L
Asteraceae
Erigeron thrincioides Griseb.
Asteraceae
Pluchea carolinensis (Jacq.) G. Don
Asteraceae
Wedellia rugosa
Bignoniaceae
Enallagma latifolia (Mill.) Small
Bignoniaceae
Tabebuia angustata Britton
Boraginaceae
Ehretia tinifolia L.
Boraginaceae
Tournefortia hirsutissima L.
Bromeliaceae
Hohenbergia penduliflora (A. Rich.) Mez
Bromeliaceae
Tillandsia valenzuelana A. Rich.
Burseraceae
Bursera simaruba (L.) Sarg.
Caesalpinaceae
Bauhinia cumanensis Kunth
Calophyllaceae
Calophyllum antillanum Britton
Calophyllaceae
Calophyllum pinetorum Bisse
Campanulaceae
Clusiaceae
Isotoma longiflora (L.) C. Presl
= Hippobroma longiflora (L.) G. Don
Cecropia schreberiana Miq. subsp. antillarum
(Snethl.) C.C. Berg & P. Franco
Clusia minor L.
Clusiaceae
Clusia rosea Jacq.
Cyatheaceae
Spheropteris myriosoides
Cyperaceae
Rynchospora sp.
Dilleniaceae
Dryopteridaceae
Davilla
nitida
= Davilla rugosa
Tectaria frimbiata
Erythroxylaceae
Erythroxylum havanense Jacq.
Euphorbiaceae
Alchornea latifolia Sw.
Euphorbiaceae
Sapium
Cecropiaceae
IUCN
Red List
Category
(Vahl)
jamaicense
Type of
endemic
CUB
CUB
Kubitzki
Sw.
Botanical family
Scientific name
IUCN
Red List
Category
Type of
endemic
LC
CUB
= Sapium laurifolium (A. Rich.) Griseb.
Fabaceae
Andira inermis (W. Wright) DC.
Fabaceae
Desmodium sp.
Fabaceae
Hebestigma cubense (Kunth) Urb.
Fabaceae
Lonchocarpus domingensis (Turpin ex Pers.) DC.
Fabaceae
Fabaceae
Lonchocarpus
pentaphyllus
(Poir.)
= Lonchocarpus heptaphyllus (Poir.) DC.
Mucuna urens (L.) Medik.
Gesneriaceae
Gesneria humilis L.
Grammitidaceae
Micrograma pilloceroides
Hymenphyllaceae
Trichomane ovale
Lamiaceae
Clerodendrum grandiflorum (Hook.) Schauer
Lamiaceae
Hyptis capitata Jacq.
Lauraceae
Cinnamomum montanum (Sw.) J. Presl
Lauraceae
Licaria triandra (Sw.)
Lauraceae
Nectandra coriacea (Sw.) Griseb.
Lygodiaceae
Lygodium volubilis
Malvaceae
Guazuma ulmifolia Lam.
Malvaceae
Malvaceae
Talipariti elatum (Sw.) Fryxell
= Hibiscus elatus Sw.
Trichospermum mexicanum (DC.) Baill.
Malvaceae
Triumfetta semitriloba Jacq.
Melastomataceae
Clidemia hirta (L.) D. Don
Melastomataceae
Miconia laevigata (L.) D. Don
Melastomataceae
Tetrazygia sp.
Meliaceae
Guarea guidonia (L.) Sleumer
Meliaceae
Trichilia havanensis Jacq.
Meliaceae
Trichilia hirta L.
Mimosaceae
Cojoba
arborea
(L.)
Britton
=Pithecellobium arboreum (L.) Urb.
Ficus membranacea C. Wright
Moraceae
Moraceae
Moraceae
Ficus subscabrida Warb.
= Ficus maxima
Pseudolmedia spuria (Sw.) Griseb.
Moraceae
Trophis racemosa (L.) Urb.
Muntingiaceae
Muntingia calabura L.
Myrsinaceae
Ardisia dentata (A. DC.) Mez
Kunth
CR
&
CUB
Rose
EN
CUB
Botanical family
Scientific name
Myrsinaceae
Wallenia laurifolia (Jacq.) Sw.
Myrtaceae
Eugenia farameoides A. Rich.
Myrtaceae
Eugenia maleolens Pers.
Myrtaceae
Psidium sp.
Nyctaginaceae
Pisonia aculeata L.
Orchidaceae
Epidendrum nocturnum Jacq.
Orchidaceae
Orchidaceae
Polystachya concreta (Jacq.) Garay & H.R.
Sweet
Vanilla sp.
Passifloraceae
Passiflora holosericea L.
Passifloraceae
Passiflora sexflora Juss.
Piperaceae
Piper hispidum Sw.
Piperaceae
Piper ossanum (C. DC.) Trel.
= Piper aduncum L.
Pothomorphe umbellata (L.) Miq.
= Piper umbellatum L.
Lithachne pauciflora (Sw.) P. Beauv.
Piperaceae
Poaceae
Poaceae
Polypodiaceae
Piresiella strephioides(Griseb.) Judz., Zuloaga &
Morrone
Campiloneurum costatum
Polypodiaceae
Polypodium polypolioides
Psilotaceae
Psilotum nudum
Pteridaceae
Adiantum latifolium
Pteridaceae
Adiantum petiolatum
Pteridaceae
Adiantum piramidalis
Pteridaceae
Adiantum pulverulenta
Pteridaceae
Adiantum tenerum
Pteridaceae
Pteris grandifolium
Pteridaceae
Heteropteris laurifolia
Rosaceae
Prunus myrtifolia (L.) Urb.
Rosaceae
Prunus occidentalis Sw.
Rubiaceae
Borreria laevis (Lam.) Griseb.
Rubiaceae
Chiococca alba (L.) Hitchc.
Rubiaceae
Rubiaceae
Chione venosa (Sw.) Urb. var. cubensis (A.
Rich.) David W. Taylor
Exostema longiflorum (Lamb.) Roem. & Schult.
Rubiaceae
Gonzalagunia sagrana Urb.
Rubiaceae
Guettarda calyptrata A. Rich.
IUCN
Red List
Category
Type of
endemic
EN
CUB
LC
local
Botanical family
Scientific name
Rubiaceae
Psychotria grandis Sw.
Rubiaceae
Psychotria horizontalis Sw.
Rubiaceae
Rubiaceae
Psychotria sulzneri Small
= Psychotria tenuifolia Sw.
Rondeletia odorata Jacq.
Rutaceae
Zanthoxylum ekmanii (Urb.) Alain
Rutaceae
Zanthoxylum fagara (L.) Sarg.
Rutaceae
Zanthoxylum martinicense (Lam.) DC.
Salicaceae
Casearia guianensis (Aubl.) Urb.
Salicaceae
Casearia hirsuta Sw.
Salicaceae
Casearia sylvestris Sw.
Sapindaceae
Allophylus cominia (L.) Sw.
Sapindaceae
Cupania americana L.
Sapindaceae
Cupania glabra Sw.
Sapindaceae
Sapotaceae
Cupania juglandifolia A. Rich.
=Cupania macrophylla
Matayba apetala Radlk.
= Matayba oppositifolia (A. Rich.) Britton
Chrysophyllum cainito L.
Sapotaceae
Chrysophyllum oliviforme L.
Sapotaceae
Sideroxylon foetidissimum Jacq.
Sapotaceae
Sideroxylon jubilla (Ekman ex Urb.) T.D. Penn.
Schizaeaceae
Anemia adiantifolia
Schizaeaceae
Anemia cuneata
Selaginellaceae
Selaginella heterodonta
Selaginellaceae
Selaginella plumosa
Selaginellaceae
Selaginella urquiolae
Simarubaceae
Picramnia pentandra Sw.
Smilacaceae
Smilax domingensis Willd.
Smilacaceae
Smilax havanensis Jacq.
Solanaceae
Cestrum laurifolium L’Hér
Solanaceae
Solanum sp.
Thelypteridaceae
Thelypteris kuntii
Thelypteridaceae
Thelypteris pinnata
Thelypteridaceae
Thelypteris santa
Urticaceae
Fleurya cuneata (A. Rich.) Wedd.
= Laportea cuneata (A. Rich.) Chew
Sapindaceae
IUCN
Red List
Category
Type of
endemic
CUB
CR
local
CUB
CR
CUB
Botanical family
Scientific name
Urticaceae
Pilea microphylla (L.) Liebm.
Urticaceae
Pilea sp1
Urticaceae
Pilea sp. 2
Vitaceae
Vitis tiliifolia Humb. & Bonpl. ex Roem.& Schult.
Zingiberaceae
Renealmia aromatica (Aubl.) Griseb.
IUCN
Red List
Category
Type of
endemic
Annex 2. Available information about promissory native trees for recovery of riparian
forest areas currently invaded by Inga punctata, emphasizing new gaps and open areas
created by tree cutting.
1. Matayba apetala (también tratada como M. oppositifolia)
Nombre común: macurije
Tipo de diáspora/propágulo: semillas, provenientes de un fruto en cápsula (Sánchez J.A. et al.
2009 )
Momento óptimo para recoger fruto: Mayo (Artiaga et al. 2012)
Recomendaciones para su propagación: no existe información disponible.
En pruebas de laboratorios Sanchez et al.
(2012) encontraron que las semillas
iniciaron la germinación a los 31 días como
promedio. La reproducción natural es
excelente en todo el bosque de galería de la
RBSR, por tanto podrían ser utilizadas plántulas moteadas en
lugares con alta densidad y no invadidos por Inga punctata.
2. Trophis racemosa
Nombre común: Ramón de caballo
Tipo de diáspora/propágulo: información no disponible
Momento óptimo para recoger fruto: información no disponible
Recomendaciones para su propagación: no existe información disponible. Se necesitan estudios que
aporten esta información.
Quizás podría ensayarse el uso de plántulas moteadas de sitios con
elevada densidad en la regeneración, donde debido a la competencia
intraespecífica muchos de ellos morirán.
3. Trichospermummexicanum
Nombre común: Majagüilla macho, guásima majagua
Tipo de diáspora/propágulo: semillas (Sánchez et al. 2009)
Momento óptimo para recoger fruto: Mayo-Junio(Sánchez et al. 2009)
Recomendaciones para su propagación: Sembrar las semillas directamente en bolsas (5 por cada
una) a 2 cm de profundidad. Se recomienda temperatura de 25 ºC
durante la noche y 35 ºC durante el día.
A los 25 días se realiza el entresaque de las plántulas para dejar la más
vigorosa; posteriormente, bolsas con las plantas deben ser protegidas
de la radiación solar durante 60 días, al cabo de los cuales, las plantas están preparadas
para ser llevadas al campo (Muñoz et al. 2012a).
Información útil: Las semillas están maduras, cuando la coloración de los frutos se torna
carmelita. Deben recolectarse los frutos antes de su apertura. El traslado de los frutos
debe realizarse en sacos de yute y nunca ser expuestos al sol, ni a bajas o altas
temperaturas. Para la obtención de las semillas se deben macerar los frutos dentro del
saco, y aventar los residuos; y retirarlos. No lavar las semillas. Poner a secar al aire y
sombra durante 72 horas y sembrar, o guardarse en frascos de cristal con cierre
hermético, en un cuarto con temperatura de 25 ºC y humedad ambiental inferior al 60
%. Nunca almacenar en refrigerador (Muñoz et al. 2012a).
3. Calophyllum antillanum (también Calophyllum pinetorum)
Nombre común: ocuje
Tipo de diáspora/propágulo: fruto (Sánchez J.A. et al. 2009 ) y
plántulas (Betancourt 1999)
Momento óptimo para recoger fruto: Enero (Sánchez J.A. et al.
2009 ), agosto- enero (Betancourt 1999)
Recomendaciones para su propagación: La reproducción natural es excelente debajo de los
árboles parentales y en sus proximidades. Debajo de un árbol productor se pueden
contar por metro cuadrado 25 o más pequeños brinzales (cohortes) de diferentes
edades.
Las semillas recién colectadas se obtiene hasta el 80-85% de germinación. Se ponen las
semillas a germinar en camadas sobre una capa de 2-3 cm de aserrín, arena, o tierra
arenosa bien mullida, y se cubren con leve capa de este material. Por sobre esta capa se
efectúa el riego a las semillas. Una vez que las semillas germinan, se toman y se
siembran a razón de 1 en cada envase. La permanencia de las plantas en el vivero debe
ser de 4 a 5 meses. (Betancourt A. 1999)
Información útil: No se recomienda el almacenamiento de las semillas en cámaras de
refrigeración porque pierde su viabilidad. (Betancourt A. 1999)
5.Talipariti elatum (también tratado como Hibiscus elatus)
Nombre común: Majagua
Tipo de diáspora/propágulo: semillas (Sánchez J.A. et
al. 2009 )
Momento óptimo para recoger fruto: Marzo (Sánchez
J.A. et al. 2009 )
Recomendaciones para su propagación: Se reporta para Cuba, en semillas frescas sin
tratamiento pregerminativo, un porcentaje de emergencia en vivero entre 40-45 %, con
inicio de la emergencia entre 8-12 días; mientras que con la aplicación de tratamiento
pregerminativo el porcentaje asciende al 69 %. Este tratamiento consiste en la
inmersión en agua a temperatura ambiente, durante 24 horas. La aplicación de
tratamiento pregerminativo previo a la siembra de las semillas y la alternancia de
temperatura debe ser cercana a 25 ºC, durante la noche y 35 ºC durante, el día. La
reproducción en vivero se realiza, mediante siembra directa de 3 a 4 semillas en bolsas,
las mismas se cubren con aproximadamente 1 cm de tierra. Las bolsas son colocadas
directamente al sol. La emergencia de las plántulas se inicia entre los 10 a 15 días,
después de la siembra (Muñoz et al. 2012b).
Información útil: . Un mes posterior al inicio de la emergencia debe realizarse un entresaque,
dejando solo una planta (la más vigorosa) por bolsa; el tiempo de permanencia en
vivero es de 4 a 6 meses (Muñoz et al. 2012b).
Fuentes de la información
Betancourt A. 1999. Silvicultura especial de árboles maderables tropicales. Editorial Científico-Técnica.
427 p.
Muñoz, B. C., J.A. Sánchez, L. Montejo, P. Herrera y A. Gamboa. 2012a. Guía técnica para la reproducción
de especies arbóreas pioneras. Ministerio de Ciencia, Tecnología y Medio Ambiente, Instituto de
Ecología y Sistemática, La Habana,38 p.
Muñoz, B. C., J.A. Sánchez, L. Montejo, P. Herrera y A. Gamboa. 2012b.Reproducción de plantas nativas
y naturalizadas del ecosistema Sabana-Camagüey. Ministerio de Ciencia, Tecnología y Medio Ambiente,
Instituto de Ecología y Sistemática, La Habana, 64 p.
Sánchez J.A., Bárbara Muñoz y Laura Montejo. 2009. Rasgos de semillas de árboles en un bosque
siempreverde tropical de la Sierra del Rosario, Cuba Pastos y Forrajes 32(2): 141
Annex 3. List of other alien plants considered invasive in Cuba which were found on
riparian forest non-invaded and invaded by Inga punctata.
Scientific name
Aristolochia ringens Vahl
Frequently Transformer Botanical family
found
in riparian
forest
Aristolochiaceae
Bambusa vulgaris Schrad. ex H.L. Wendl.
x
Bromelia pinguin L.
Poaceae
Bromeliaceae
Citrus aurantium L.
x
Cyperus alternifolius L. subsp. flabelliformis
(Rottb.) Kük.
Delonix regia (Bojer ex Hook.) Raf.
x
Rutaceae
x
Cyperaceae
Caesalpinaceae
Dichrostachys cinerea (L.) Wight & Arn. var.
africana Brenan & Brummitt
Dioscorea bulbifera L.
Mimosaceae
Erythrina poeppigiana (Walp.) O.F. Cook
Fabaceae
Macrothelipteris torresiana (Gaudich.) Ching
Thelypteridaceae
Mammea americana L.
Calophyllaceae
Mangifera indica L.
Dioscoreaceae
x
Anacardiaceae
Mimosa pigra L.
Mimosaceae
Murraya paniculata (L.) Jack
Rutaceae
Oeceoclades maculata (Lindl.) Lindl.
x
Orchidaceae
Phaius tancarvilleae (L’Hér.) Blume
Orchidaceae
Pteris vittata L.
Pteridaceae
Spathodea campanulata P. Beauv.
Bignoniaceae
Syzygium jambos (L.) Alston
x
x
Tithonia diversifolia (Hemsl.) A. Gray
Trimezia steyermarkii R.C. Foster
Myrtaceae
Asteraceae
x
x
Iridaceae
Urena lobata L.
Malvaceae
Vitex trifolia L.
Lamiaceae
¿cómo eliminar el charagüito?
La tala de los árboles puede ser utilizada, pero sólo es
exitosa si se remueven los rebrotes al menos 2 veces luego de
la tala, y sobre todo se acompaña con la siembra en el lugar
talado de algunas posturas grandes de Macurije (Matayba
apetala) fundamentalmente, acompañadas por algunas de
Ramón de caballos (Trophis racemosa), Majagüilla macho
(Trichospermum mexicanum), Ocuje y Majagua. De lo
contrario el charagüito se apodera en un año del claro hecho
y el número de árboles productores se duplica.
Pero la mejor forma para eliminarlo y propiciar la
recuperación del bosque nativo, parece ser el doble
anillamiento (ver foto abajo) de los troncos. Mejor si se le
realiza a la mitad de los adultos presentes en el área a
trabajar. También deben ser removidos los rebrotes,
pero su número es menor. Se ha visto incrementarse
considerablemente la cantidad de plantas nativas, y
también amenazadas, luego de esta práctica. Incluso sin
acompañamiento de siembra de posturas de especies
nativas.
¿Cómo llegó a Cuba?
Proveniente de México, fue introducida durante la década
de 1940 en una finca privada de la Sierra del Rosario, en la
actual comunidad El Roble, probablemente por sus semillas
comestibles. Se cree que de allí fue llevada y plantada en
otra finca privada ubicada en la actual comunidad de
Mango Bonito. Estos dos puntos de introducción parecen ser
los puntos de origen de la invasión de charagüito en Sierra
del Rosario.
¿Qué acciones son necesarias?
La conservación de los bosque nativos de Sierra del Rosario y
también de los servicios que ellos le prestan al hombre (desde
la obtención de madera para construcciones y muebles, las
plantas medicinales usadas por nuestros mayores desde
siempre, hasta la futura disponibilidad del agua que es
capturada y encauzada por estos bosque nativos), depende
en buena medida de que la invasión de charagüito sea
frenada, controlada.
Para ello es necesario ganar todos en conciencia. Eliminarla
progresivamente, siempre propiciando la recuperación del
bosque nativo, evitando formar claros que son rápidamente
recolonizados por el charagüito. Evitar la introducción
intencional en nuevos puntos, comunidades y ríos de la Sierra
del Rosario donde aún está ausente. Prevenir que no invada
con fuerza y transforme las áreas núcleo de la Reserva de
Biosfera, pero también los ríos que no están tan afectados y los
fragmentos de bosque nativo persisten en sierra.
¿Qué usos tiene?
Su madera puede ser utilizada como fuente de
leña. Sus semillas están rodeadas de una pulpa
algodonosa y dulce, que son utilizadas como
alimento por numerosas personas en Sierra del
Rosario. Recientemente algunas personas están
utilizando las semillas como sucedaneo del café.
Si quiere colaborar con el control de charagüito o
reportar su presencia en otros sitios no marcados en el
mapa, contácte con la administración de la Reserva de
Biosfera Sierra del Rosario en Las Terrazas
Fotos: Ricardo Rosa
Textos: Lisbet González-Oliva
La Habana, enero de 2015
PLANTAS INVASORAS DE MAYOR
PREOCUPACIÓN EN CUBA:
IDENTIFICACIÓN Y MANEJO
CHARAGÜITO
(Inga punctata)
Inga punctata Willd. [Mimosaceae]
Nombre comun: Charagüito
¿Por qué es un problema?
El charagüito está invadiendo y transformando los
bosques de galería o de márgenes de ríos, las orillas de
carreteras, caminos y veredas. Desplaza rápidamente a
todas las especies nativas de los bosques de la Sierra del
Rosario: las endémicas, las amenazadas, pero también
las maderables y las medicinales. Incluso está
desplazando a la pomarrosa que es considerada la
invasora más agresiva de los bosques de orillas de ríos.
Quedando sólo bosques casi puros de charagüito.
El charagüito aprovecha rápidamente los claros
del bosque. Produce muchas vainas con numerosas
semillas que germinan antes de caer al suelo. Una
vez en el suelo casi todas las semillas de estas vainas
se establecen creando algo parecido a un semillero
que rápidamente se convierte un parche de bosque
de charagüito que produce más vainas.
Actualmente es un problema en gran parte de la Sierra del
Rosario. Es muy abundante en los ríos San Cristóbal, Santiago y
Manantiales; y en sus afluentes. También en el río Bayate y
afluentes, dentro de la Reserva de Biosfera. Otros sitios donde
crece charagüito son el entorno de Las Terrazas, cercano al río
San Juan, y en un pequeño sector del río San Miguel por la
comunidad Los Cayos. Además en El Salón, una de las áreas
núcleo de la Reserva de Biosfera, donde se localizan unos
pocos adultos. El otro sitio de Cuba donde puede encontrarse
es el Jardín Botánico Nacional en La Habana.
IMPACTO Y MANEJO
Impacto en Cuba: En los bosques de galería de
Sierra del Rosario desplaza rápidamente las
especies nativas (y hasta la pomarrosa, la invasora
más agresiva de este tipo de bosques en Cuba)
convirtiéndose rápidamente en dominante y luego
en bosques monoespecíficos de charagüito. Lo
mismo ocurre en los claros del bosque generados de
manera natural o antrópica.
Sugerencias para el manejo: La tala por sí sola no
es efectiva puesto que se duplica el número de
individuos adultos en poco tiempo. Debe
acompañarse de la reforestación de los claros
dejados y de la remoción de los numerosos rebrotes
a los 3, 6 y 9 meses. Con el doble anillamiento de los
troncos seguido de la remoción de rebrotes se
obtienen mejores resultados. Se reduce el número
de adultos de charagüito en el área tratada y se
potencia el reclutamiento de especies nativas en la
regeneración, aún sin aplicar reforestación.
Serie Plantas invasoras
Esta serie se creó para facilitar la identificación y gestión
de las especies invasoras más agresivas en Cuba o de
marcado interés en algunas áreas protegidas.
Volúmenes de la Serie
Volumen 1: Introductorio
Volumen 2: Ética en el tratamiento a las especies exóticas
Volumen 3: Dichrostachys cinerea
Volumen 4: Syzygium jambos
Volumen 5: Acacia farnesiana
Volumen 6: Leucaena leucocephala
Volumen 7: Casuarina equisetifolia
Volumen 8: Melaleuca quinquenervia
Volumen 9: Eichhornia crassipes
Volumen 10: Mimosa pigra
Volumen 11: Albizia procera
Volumen 12: Bothriochloa pertusa
Volumen 13: Spathodea campanulata
Volumen 14: Inga punctata
Volumen 15: Myriophyllum pinnatum
Volumen 16: Nephrolepis hirsutula
Volumen 17: Tithonia diversifolia
Volumen 18: Macrothelypteris torresiana
Volumen 19: Schinus terebinthifolius
Volumen 20: Egeria densa
Volumen 21: Hydrilla verticillata
Volumen 22: Pistia stratiotes
Volumen 23: Bromelia pinguin
Volumen 24: Sida ulmifolia
Volumen 25: Heteropogon contortus
Volumen 26: Albizia lebbeck
Volumen 27: Casuarina glauca
Volumen 28: Oeceoclades maculata
Volumen 29: Sansevieria hyacinthoides
Volumen 30: Terminalia catappa
Volumen 31: Hyparrhenia rufa
Volumen 32: Cenchrus purpureus
Volumen 33: Bambusa vulgaris
Volumen 34: Hedychium coronarium
Volumen 35: Syngonium podophyllum
Serie de folletos informativos sobre
Plantas invasoras
Vol. 14: Inga punctata
Edición: Julio César Álvarez, Ledis Regalado y Lisbet González-Oliva
Diseño: Josmaily Lóriga
Inga punctata
Fotografías: Ricardo Rosa
Mapas: Arturo Hernández
Ilustraciones: Gustavo Pineda
Doble anillamiento practicado al tronco de individuos de charagüito.
Usos: Sus semillas están rodeadas de una pulpa
algodonosa y dulce que es comestible y muy
apreciada por las personas en Sierra del Rosario.
También se ha utilizado su madera como leña.
Ante observaciones en nuevas localidades o
eventos relevantes para su manejo, comuníquese
con los autores
Editado en La Habana, febrero de 2015
Ricardo Rosa, Lisbet González-Oliva, Ramona
Oviedo, María T. González y Arturo
Hernández
Instituto de Ecología y Sistemática (AMA, CITMA)
E-mails: [email protected] y
[email protected]
INFORMACIÓN BÁSICA
DISTRIBUCIÓN
Familia: Mimosaceae
Distribución mundial: Nativa de América continental, se
Nombre científico:
Inga punctata Willd.
extiende desde el Sur de México hasta Bolivia, abarcando
un amplio rango altitudinal, desde el nivel del mar hasta los
Nombre comune: Charagüito
2000 m.s.n.m. Naturalizada en las Antillas.
Descripción botánica: Árbol de hasta 20 m de altura y
tronco de 60 cm de diámetro, con lenticelas en hileras. Hojas
compuestas, con 2-3 pares de folíolos de tamaño desigual
que se estrechan gradualmente hacia el ápice terminando en
punta, con pelos diminutos en su cara inferior y nectarios
foliares planos o en forma de plato ubicados entre pares de
folíolos. Inflorescencias axilares, de 2-8 cm de largo, flores
en espigas cortas, de 1-3 cm de largo, fragantes, color verde
pálido con estambres blancos o cremas. Frutos en legumbre
de 8-20 cm de largo y 2-3 cm de ancho, verde o verdeamarillentos, sin pelos.
Fenología: Floración entre junio y agosto. Fructificación
entre agosto y octubre.
Dispersión: Por frutos (vainas) que caen al suelo con todas
sus semillas ya germinadas, listas para establecerse
formando grandes y densos semilleros. Además, por semillas
que son dispersadas por los humanos que comen el arilo
blanco y dulce que las recubre, y sembaradas debido a este
uso como frutal.
Distribución en Cuba: Proveniente de México, fue
introducida durante la década de 1940 en una finca
privada de la Sierra del Rosario, en la actual comunidad El
Roble, probablemente como frutal. Actualmente es un
problema en Sierra del Rosario, Artemisa. Invasde la
vegetación de galería de los ríos San Cristóbal, Santiago y
Manantiales. También en el río Bayate y afluentes, dentro de
la Reserva de Biosfera, alrededores del poblado Las
Terrazas y en el Salón. También en un pequeño sector del río
San Miguel por la comunidad Los Cayos, donde fue
introducida recientemente. Además, en la colección viva del
Jardín Botánico Nacional en La Habana.
Ecosistemas que invade en Cuba: Crece en bosques de
galería, bosque siempreverdes, claros y bosques
degradados, bordes de las principales carreteras de la
Sierra del Rosario, así como caminos y veredas donde caen o
son arrojadas las semillas luego de ser comido el arilo.
nectario foliar
1 cm
hoja compuesta
con folíolos de
diferentes tamaños
folíolos con pelos diminutos
Bosque de galería invadido por charagüito, Sierra del Rosario, Artemisa.