EPR2

SDSL-EPR:
Site Directed Spin labeling-EPR
Uno spin label, generalmente
nitrossido, viene introdotto nella
proteina mediante mutagenesi sito
specifica rendendo possibile
un’indagine paramagnetica
mediante EPR
e
SDSL
(1-oxil-2,2,5,5-tetramethylpyrroline-3methyl)methanesulphonate
• Si produce un mutante sitospecifico sostituendo un
amminoacido pre-esistente con
cisteina. Si fa reagire la cisteina
con un nitrossido funzionalizzato,
generalmente un
metanotiosulfonato ex. MTSSL
Cys
native AA
Cys
SDSL e struttura proteica
Proprietà dello SL
• Dinamica
Parametro sensibile
<g>, <A>=f(ω,τ,∆Ω)
J=f(ω,C)
• Accessibilità (CROX or NiEDDA;O2)
• Interazione Dipolare
D=f(1/r3)
Modelli di domini proteici
Interazioni proteina-proteina
Cambi conformazionali
Spettro EPR del radicale nitrossido:
H = βe S g B
+SAI
gx=2.0091, gy=2.0061, gz=2.0023
I=1, Ax= 6.2, Ay = 6.3, Az=33.6
z
x
y
Segnale di polvere
in proteina
spettro risultante appare con 5 bande
Dinamica
L’anisotropia di g ed A rende il nitrossido sensibile
alla mobilità della biomolecola cui si trova legato
Il moto molecolare modula nel tempo l’anisotropia e lo spettro EPR del
nitrossido cambia aspetto a seconda dello stato dinamico della biomolecola
marcata.
La libera mobilità molecolare provoca il time averaging degli elementi della
diagonale principale dei tensori g ed A
g = 1/3 (gxx+gyy+gzz)
A = 1/3 (Axx+Ayy+Azz)=aiso
ne risulta uno spettro
EPR caratterizzato da tre
bande:
VARIAZIONI
di
M O B I L I T A’
- temperatura
- ingombro sterico
- interazioni
∆H0 e <H2> parametri spettrali correlati alla mobilità:
dipendono dalla mediazione di g e A rispettivamente
∆H0 : sensibile alla
mediazione di g
∆H 0
( B − B ) I ( B )dB
∫
=
∫ I ( B)dB
2
H
2
0
Secondo momento
sensibile alla
mediazione del
tensore A
Andamenti per 1/∆
∆H0 e 1/<H2> parametri di mobilità:
∆H0
5.5
<H2>-1 Gauss-2*1000
mobile
immobile
loops
5.0
4.5
helix surface
4.0
tertiary interaction
buried
0.1
0.2
0.3
0.4
< ∆ H0>-1 Gauss-1
0.5
<H2>
Periodicità di “mobilità” per eliche per metà esposte e per
metà in contatto terziario
< ∆ H0>-1 Gauss-1
<H2>-1 Gauss-2*1000
scanning via SL l’elica H della lisozima T4L :
Periodo delle oscillazioni=3.6!
residue
Accessibilità Π
rilassamento collisionale con molecole paramagnetiche:
CROX: potassium-tris(oxalatochromate) carico
O2: si ripartisce nella fase lipidica non polare
entrambi esclusi dal core della proteina
CROX
fase acquosa
O2 CROX
CROX
CROX
O2
R
S
NO
CROX
CROX
CROX
O2
O2
O2
O2
O2 O2
O2 membrane
O2
Curve di
saturazione
In presenza di rilassatore
In assenza di rilassatore
A
∆H0
P1/2: livello di potenza al quale l’ampiezza del
segnale saturato è metà dell’ampiezza max.
Teorica in assenza di saturazione Parametro
determinabile sperimentalmente
∆P1/2: differenza nei valori di
P1/2 dello SL in presenza e in
assenza di rilassatore
Accessibilità
A = ampiezza max.
Π = f(∆P1/2)
L’accessibilità varia periodicamente lungo una sequenza con
struttura secondaria regolare se vi è asimmetria nell’intorno
Max
O2
Water-soluble
protein
Transmembrane
water filled pore
Surface
adsorbed helix
SDSL-EPR
Come ottenere vincoli basati su determinazioni di distanze
per l’elaborazione di modelli molecolari strutturali:
Site Directed Spin Labeling Dipolar Electron
Paramagnetic Resonance
Spectroscopy (SDSL - EPR)
Resonance Energy Transfer
(FRET)
DSDSL ed EPR
Interazione dipolo-dipolo tra DUE SPIN LABELS:
Interazione Dipolare
D=f(1/r3)
• allargamento degli spettri EPR
• dall’analisi spettrale si risale alla misura della DISTANZA
Energia di interazione tra dipoli magnetici µ1 e µ2 posti a
distanza r:
r r
r r r r
µ 0  µ1 ⋅ µ 2 3(µ1 ⋅ r )(µ 2 ⋅ r ) 
−
U dipolar =


5
4π  r 3
r

proporzionale a (1-3 cos2θ) dove θ è l’angolo tra il
vettore interspin e il campo magnetico esterno
B
g β µ0  sˆ1sˆ2 3( sˆ1r )( sˆ2 r ) 
ˆ
H SS =
 3 −

5
4π  r
r

2
θ
r
2
3 gβ (3 cos 2 θ − 1)
∆Bdip (r ,θ ) =
2r 3
∆ B dip ( r , θ )
Studio del
movimento di domini
proteici indotto
dall’entrata del
substarto nella
lisozima T4L
Allargamento
spettrale dovuto
all’interazione
dipolare.
Misure a
temperatura
ambiente
Hubbel et al. 2000, Nature struct.Biol,7,735